实验应用:鼠尾胶原在原代培养耳蜗血管纹边缘细胞中的应用。目的:建立利用自制的鼠尾胶原培养大鼠耳蜗边缘细胞的方法。方法:制作鼠尾胶原,并观察利用自制的鼠尾胶原所培养出大鼠耳蜗边缘细胞的效果。结果:自制的鼠尾胶原能正常地培养出大鼠耳蜗边缘细胞,细胞角蛋白18表达阳性,免疫组织化学结果和扫描电镜证实所培养的细胞具有典型的分泌上皮细胞特征。结论:成功建立了利用自制鼠尾胶原培养大鼠耳蜗边缘细胞的方法,并且制作简便,成本低廉。制备鼠尾胶原:摇晃,使尾腱分散于醋酸溶液中,4℃放置一星期。宁波鼠尾胶原厂家推荐
鼠尾胶原醋酸溶解:1.将鼠尾胶原加入到0.1M的醋酸中,制备成浓度为0.1%的溶液。在室温中搅拌1-3小时直到完全溶解。2.建议将溶液转移到拧口的玻璃瓶中,并小心的在瓶底铺上一层氯仿。氯仿的量约为胶原溶液的10%。不要晃动或搅拌。在2-8度中放置过夜。在无菌条件下转移上层的胶原溶液。我们不建议用过滤的方法无菌化。已经发现该方法会导致丢失蛋白。3.稀释一定数量的胶原溶液。4.按照6-10ug/cm2的浓度包被培养瓶。在室温或37度结合数小时或者2-8度过夜。5.从包被表面除去多余的液体。过夜干燥。如果胶原溶液不是无菌的,这时候可以在无菌细胞操作室中暴光在紫外线下过夜消毒。在接种细胞前用无菌的水漂洗。上海正规鼠尾胶原单价冻干鼠尾腱经低温冻干粉碎至目。
鼠尾胶原的生物矿化和TEM观察:果冻样Ⅰ型胶原蛋白胶体初始浸泡在矿化液中时呈微白色;矿化2d后,胶体的颜色逐渐加深至乳白色;矿化6d后,随着羟基磷灰石晶体矿化长入胶原纤维内部,胶体颜色加深至纯白色,并在胶体表面沉积了一层薄薄的羟基磷灰石钙晶体,予镊子夹起,其表层羟基磷灰石钙晶体破碎散落。TEM表征显示:矿化2d后,Ⅰ型胶原纤维的明暗相隔周期性条纹结构逐渐模糊,羟基磷灰石钙前体渗入胶原纤维内部,胶原纤维部分矿化,沿着胶原纤维生长,忖度变深;矿化6d后,Ⅰ型胶原纤维的明暗相隔D-Band结构完全消失,胶原纤维内部可以看到黑色羟基磷灰石晶体,嵌入胶原纤维纵向生长。当鼠尾Ⅰ型胶原纤维完全矿化时,由于整条胶原纤维都被羟基磷灰石钙晶体占据,胶原纤维呈现黑色,选区衍射斑图符合羟基磷灰石表征。
鼠尾胶原蛋白等实验技术应用:干细胞、血管内皮细胞等多种「难伺候」的细胞,以及一些组织在体外培养时,需要在模拟体内环境的细胞外基质中生长,胶原蛋白和纤粘蛋白正是细胞外基质的主要组成部分,富含1型胶原蛋白大鼠尾部也成了实验室用胶原蛋白的较主要来源。鼠尾取血剪下几毫米小鼠尾巴、在小鼠尾静脉上划一道小口、用注射器抽取的操作都可以得到这种鲜红的。它可以用于监测小鼠血液成分的变化,确认小鼠是否患上了糖尿病或者某些治好能够改变小鼠的血糖等。比起心脏和眼部取血,实验用鼠尾尖取血的取血量较小,但取血之后,小鼠还能继续下一步建模或者实验,完全没有性命之忧。将培养器皿在室温放置20min待胶凝固后,加入适当体积的细胞培养液,转移到培养箱中培养。
鼠尾胶原:含细胞三维胶原凝胶的制备(以配制1mg/mL三维胶1mL为例)准备好悬浮于培养液的细胞,并放置于冰浴中。将200μL本品加到12μL0.1mol/LNaOH中(如果反过来把12μL0.1mol/LNaOH加到胶原溶液中,会由于NaOH不能迅速混匀而产生局部的胶原凝结),立即混匀。再加入23μL10×PBS或10×培养液,混匀后立即加到培养器皿中(混匀后pH为7左右,如果PBS或培养液中没有加酚红,初次使用时需要测定pH值)。加入760μL的细胞悬浮液,混匀后立即加到培养器皿中。将培养器皿在室温放置20min待胶凝固后,加入适当体积的细胞培养液,转移到培养箱中培养。本品在室温下pH中性时可迅速成胶,在操作过程中要尽量保持低温。保存条件4℃保存,切勿冻存,有效期一年。鼠尾胶原醋酸溶解:在2-8度中放置过夜。合肥石家庄鼠尾胶原
前庭毛细胞贴附于培养皿底壁,易于封接和长时间(约8h)的观察和记录。宁波鼠尾胶原厂家推荐
胶原蛋白的提取方法:1.碱法提取:碱法提取胶原蛋白常用的处理剂为石灰、氢氧化钠、碳酸钠等。如Holzer等[5]采用1%~1.5%石灰水浸泡的方法提取胶原蛋白。由于它容易造成肽键水解,因此得到的水解产物分子量比较低。所以,若想保留胶原的三股螺旋结构,此法不可取。2.盐法提取:盐法提取胶原蛋白所用的中性盐有盐酸-三羟甲基胺基甲烷(Tris-HCl)、氯化钠、柠檬酸盐等。在中性条件下,当盐的浓度达到一定量时,胶原溶解。并且可采用不同浓度的氯化钠对提取的胶原蛋白进行盐析处理,可以沉淀出不同类型的胶原蛋白。宁波鼠尾胶原厂家推荐
鼠尾胶原蛋白Ⅰ型使用方法及注意事项:将培养器皿在室温(25度左右)下放置20分钟待胶凝固后,转移到培养箱内。如果配制中使用的是10PBS,使用前需要加入适当体积的细胞培养液预平衡。B.含细胞的三维胶原的制备(以配制200ul鼠尾胶原蛋白(5mg/ml)加到(如果反过来把12ul0.1mol/LNaOH加到胶原溶液中,会由于NaOH不能迅速混匀而产生局部的胶原凝结),立即混匀。再加入23ul10PBS10培养液,混匀(混匀后pH左右,如果PBS或培养液中没有加酚红,初次使用时需要用pH试纸测试)。加入760ul的细胞悬浮液,混匀后立即加到培养器皿中。将培养器皿在室温下放20分钟待胶凝固后,加入适...