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RNA各种可逆的化学修饰被认为是一种新的表观遗传调控方式。m6A是真核生物mRNA常见的化学修饰,在调控mRNA稳定性,剪切和翻译方面具有重要的作用。作者使用转录组测序发现了METTL3(甲基转移酶3),一种主要的RNAN6-腺苷-甲基转移酶,在人肝细胞(HCC)和多种实体中高表达。在临床上,METTL3的过度表达与肝细胞患者不良预有关。体外实验证明敲除METTL3会抑制HCC细胞增殖,迁移及克隆形成。体内实验证明敲除METTL3会明显抑制HCC体内成瘤和肺转移。另外,使用CRISPR/dCas9-VP64系统,内源性高表达METTL3会促进HCC细胞在体外和体内生长。通过转录组测序、m6A-Seq、MeRIP-PCR,作者确定了SOCS2(细胞因子信号2的抑制因子)作为METTL3介导的m6A修饰的下游靶基因。敲除METTL3表达会消除SOCS2mRNAm6A修饰并增强SOCS2mRNA表达。m6A介导的SOCS2mRNA降解是依赖于m6A“读取器”蛋白YTHDF2。总之,METTL3在HCC大部分高表达中,并通过m6A-YTHDF2依赖机制抑制SOCS2表达从而促进HCC进展。因此,作者发现了在肝发生过程中表观遗传改变的一种新机制。图4RNA甲基化转移酶METLLT3在肝组织中高表达。云南大鼠科研技术服务培养建立疾病模型的目的是为了防治人类疾病。

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METTL3能够促进肺腺细胞的生长、生存和侵袭,但还不清楚它是否作为m6A调节器或效应器发挥作用[25]。在急性髓细胞白血病(AML)患者中,m(6)A调控基因的突变或拷贝数变化与TP53突变存在密切联系,且m(6)A调控基因的改变与AML不良预相关[26]。此外,FTO在AML中高表达,它通过降低mRNA转录本中的m(6)水平,调节ASB2和RARA等靶点的表达,增强了白血病基因介导的细胞转化和白血病形成,并抑制全反式维甲酸(ATRA)诱导的AML细胞分化[27]。在脂肪形成过程中,FTO表达与m6A水平成负相关,促进脂肪形成[3]。在胶质细胞瘤样细胞中,ALKBH5通过lncRNAFOXM1介导FOXM1基因pre-mRNA上的m6A修饰维持胶质瘤细胞的成瘤性[28]。此外,甲基转移酶METTL3或METTL14的敲除,能够改变m6A的富集和ADAM19的表达,极大地促进了胶质瘤细胞的生长、自我更新和形成[29]。图2m6ARNA修饰和介导的功能[30]m6A的研究方向主要是通过研究m6A修饰相关的甲基化、去甲基化酶和识别蛋白的功能,进而研究m6A修饰的生物学功能和作用机制:一般通过敲除m6A酶分子,研究下游功能基因分子的表达和m6A甲基化情况,通过介导相关基因异常(可变剪切、稳定性、翻译、miRNA调控)影响细胞表型和功能特征。

1.首要原则:细胞不重要情况下立即丢弃,培养箱灭菌,所用培养基也都要丢弃,器械等重新灭菌或拆用新的。2.细菌污染一般都救不回来了,发现的时候培养基一般都很浑浊且细胞都死了3.污染且细胞很重要时:遇到念球菌污染,且细胞为基因改造细胞,非常重要。如231贴壁乳腺细胞,发现细胞周围出现很小的串珠透亮圆点,非常像念球菌污染,此时细胞状态尚可,且污染少。处理如下:用预热或室温PBS清洗3次,可适当振摇,将污染冲洗下来。随后加入10-20%双抗到培养瓶,置于37度培养箱1h,之后再用PBS清洗三遍,直至视野下无可见污染。此时细胞也被冲下大部分,因此此方法只适用在细胞贴壁强,状态好,密度高时使用。之后每天再更换培养基,每次用PBS冲洗2遍。过几天细胞状态尚可时,消化离心时用500r,3min,去掉上清,重复3次。这个方法是根据文献可利用念球菌和细胞体积重量差异实现分离。基本上这一步做完以后,污染就基本了,接下来就注意多观察,勤换液就行。干货分享 | 避坑,微生物培养的污染因素及预防方法,少走弯路。

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科手术设备|细胞/组织支持系统|膜片钳|辅助设备|其它常用耗材烧杯|漏斗|量筒|广口罐|研钵和研杵|手套|移液管|移液器(Pipette)单道手动移液器|单道电动移液器|多道手动移液器多道电动移液器|正置换移液器|瓶口分液器吸头(Tips)滤芯吸头(灭菌)|滤芯吸头(未灭菌)|普通吸头(灭菌)普通吸头(未灭菌)|多道移液器吸头液体工作站吸头|其它瓶(Bottle)离心瓶|称量瓶|存储瓶|比重瓶|血清瓶|滴瓶吸气瓶|细胞培养瓶|培养基瓶|其它瓶(Flask)蓝盖瓶|烧瓶|平底烧瓶|克氏(长颈)烧瓶|碘测定烧瓶|蒸馏烧瓶|容量瓶|过滤瓶|其它管(Tube&Vial)离心管|微离心管|样品储存管|冻存管|反应管聚乙烯保存管|细胞培养管|自动上样管|其它PCR耗材PCR管|PCR条板|PCR板|实时定量PCR毛细管其它微孔板微孔板(96孔)|微孔板(384孔)|微孔板。EdU细胞增殖检测是一种快速、准确、灵敏的细胞增殖检测方法.贵州大鼠科研技术服务构建

干货分享 | TUNEL法检测细胞凋亡原理和经验.江苏疾病科研技术服务构建

建议按照2×106每孔的数量将293T细胞均匀铺入。(2)第二天:在24小时之内,观察293T细胞的汇合度在90%~95%之间时,向其中加入DNA-脂质体复合体,DNA-脂质体复合体制备方法如下:a)轻轻混匀LipoMax,根据说明书加入相应量于500µlOpti-MEM无血清培养基中,混合均匀并置于室温5分钟。b)在500µlOpti-MEM无血清培养基中稀释DNA,总质量为15µg按照载体质粒:psPAX2:=4:3:1的比例加入DNA。c)将稀释后的LipoMax和稀释后的DNA轻轻混匀,常温静置20分钟,形成DNA-LipoMax复合体。(3)将DNA-LipoMax复合体轻柔地滴加至细胞培养皿中,轻轻摇晃培养皿混匀,放入细胞培养箱中培养。(4)病毒收集浓缩病毒:加入DNA-LipoMax复合体48小时后,收集病毒上清,同时加入10ml预温的293T培养基到细胞培养皿中。将收集到的病毒上清存在4℃冰箱中;收集72小时病毒上清,与48小时病毒上清混在一起。将离心机温度降温到4℃,600g,离心5分钟,去除其中的细胞碎片,上清液经µm滤头过滤,加入病毒浓缩液,配制浓缩病毒液。将浓缩后的病毒放于4℃冰箱摇床上,旋转过夜。第二天,4度离心机,3000~4000g离心15分钟。弃掉上清液,加入1Xpbs或培养基重悬。江苏疾病科研技术服务构建

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