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外泌体的提取方法：1、磁珠免疫法。外泌体表面有其特异性标记物（如CD63、CD9蛋白），用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合，即可将外泌体吸附并分离出来。磁珠法具有特异性高、操作简便、不影响外泌体形态完整等优点，但是效率低，外泌体生物活性易受pH和盐浓度影响，不利于下游实验，难以普遍普及。2、多聚物沉淀法。聚乙二醇（PEG）为常用的多聚物，可与疏水性蛋白和脂质分子结合共沉淀，早先应用于从血清等样本中收集病毒，现在也被用来沉淀外泌体，其原理可能与竞争性结合游离水分子有关。利用PEG沉淀外泌体存在不少问题：比如纯度和回收率低，杂蛋白较多（假阳性），颗粒大小不均一，产生难以去除的聚合物，机械力或者吐温-20等化学添加物将会破坏外泌体等所有培养的细胞类型均可分泌外泌体，且外泌体天然存在于体液中，包括血液、唾液、尿液、脑脊液和乳汁中。广州外泌体提取试剂直销价

研究初次发现疟原虫传染小鼠血浆外泌体(exosomes)能够压制一些病症血管生成，并初步阐明其分子机制。研究加深了对疟原虫传染宿主所分泌的外泌体与一些病症血管生成之间的相互作用的认识，为开发疟原虫传染来源的外泌体作为一种新型抗一些病症制剂奠定了基础。研究人员选用肺病小鼠模型作为研究对象，从传染疟原虫的小鼠血浆中获得外泌体，并将这些外泌体注射到小鼠的一些病症内部，并与没有疟原虫传染的小鼠血浆外泌体进行对照。研究发现，疟原虫传染小鼠的血浆外泌体明显压制一些病症血管的生成。进一步的研究发现，疟原虫传染的小鼠血浆外泌体通过至少四种特殊的微小RNA(miR16-5p/17-5p/322-5p/497-5p)压制血管内皮细胞VEGF受体(VEGFR2)的表达从而阻断血管生成的信号通路。这些发现加深了人们对疟原虫抗病机理的理解，并为疟原虫疗法治病一些疾病的临床研究提供进一步的理论依据。外泌体提取试剂生产厂家外泌体（Exosome）发现于1986年，是一种直径约30~100nm的双层膜囊泡状结构小体。

1996年GRaposo等发现类似于B淋巴细胞的免疫细胞也会分泌抗原呈递外泌体（antigenpresentingvesicle），所分泌的外泌体可以直接刺激效应CD4+细胞的抗一些病症反应。2007年HValadi等进一步发现细胞之间可以通过外泌体中RNA交换遗传物质。随着有关外泌体研究越来越多，研究者发现它普遍参与了机体免疫应答、抗原呈递、细胞分化、一些病症生长于侵袭等各种生物过程中。目前的主流观点认为，外泌体的产生过程为：细胞膜内陷，形成内体（endosome），再形成多泡体（multivesicularbodies，MVB），较后分泌到胞外成为外泌体。外泌体中携带有母细胞的多种蛋白质、脂类、DNA和RNA等重要信息。外泌体较早见于1981年，EGTrams等在体外培养的绵羊红细胞上清液中发现了有膜结构的小囊泡，并命名为exosome。对于外泌体的作用，当时推测为细胞排泄废物的一种方式。

外泌体的提取方法学规范、统一定量及鉴定等。关于外泌体的提取有超速离心、试剂盒、超滤法、蔗糖密度梯度离心等，然而各种方法均有其利弊。超速离心法是目前外泌体相关文章中的主流方法，由于离心步骤繁琐，费事费力，而且步骤多导致实验中容易污染，且损耗量大，使得较终回收的外泌体不稳定。而且对于抽提细胞上清来说，更是极为不请便，试想用提取300ml的上清需要6个50ml离心管，无论是过滤还是后续的每一步的离心去沉淀，都具有操作极其不便的缺点，总之非常麻烦。而超滤法存在外泌体会堵塞膜孔，造成浓缩效率低，浓缩管重复利用差，甚至堵塞在膜孔的外泌体还可能会粘连成团，造成损失及较后的数据有误差，对于后续实验也有影响近几年来，市场上已出现各种商业化的外泌体提取试剂盒。

外泌体与免疫系统：不同的细胞来源的外泌体，包括免疫细胞(B细胞和树突状细胞)、病细胞、上皮细胞和间充质细胞，释放出带有载体的外泌体，可影响先天免疫系统和适应性免疫系统中受体细胞的增殖和各自的活性。CD4+和CD8+T细胞可直接或间接地受到外泌体的影响，刺激或压制其增殖和功能。外泌体与代谢性和心血管疾病：外泌体可以通过携带miRNA或代谢物分子在代谢性疾病和心血管疾病的发生的发展过程中起作用。体外培养心血管疾病的细胞收集的外泌体与疾病相关的代谢适应有关；体外培养的间充质干细胞和胚胎干细胞的外泌体具有保护心血管的作用。这些发现表明不同来源的外泌体可以通过传递miRNA，蛋白等物质改变受体细胞的代谢状态。外泌体检测作为一种新型的液体活检热点技术已被许多临床科研机构普遍地应用于一些病症和疾病的无创诊断。外泌体提取色谱法是利用根据凝胶孔隙的孔径大小与样品分子尺寸的相对关系而对溶质进行分离的分析的方法。外泌体提取试剂生产厂家

外泌体的提取分离：密度梯度离心。广州外泌体提取试剂直销价

外泌体的提取方法，先用含无外泌体血清的培养基对人脂肪来源间充质干细胞进行饥饿培养，这样可使干细胞处于正常生长状态，不会被克制生长增殖，其所分泌的外泌体所包含的有效物质也更贴近其自然状态下的外泌体，然后将含有外泌体的培养上清液进行低速差速离心(即先一离心处理、再第二离心处理)以去除细胞及其碎片，用100kd超滤管对低速差速离心后的离心液进行超滤浓缩得到外泌体浓度更高的超滤液，将超滤液经过第三离心处理去除杂质后直接用0.22μm过滤器过滤除菌，过滤掉粒径为220nm以上的物质，进一步得到含颗粒粒径小于220nm的浓缩液，因超滤浓缩处理和第三离心处理使得液体量浓缩，这样过滤除菌效率得到较大提高，较后将浓缩液进行超速离心的第四离心处理分离提取到外泌体。广州外泌体提取试剂直销价