缺血性卒中的病理生理及药物治*缺血性卒中主要诱发神经血管单元（NVU）一系列的缺血级联反应（包括兴奋性氨基酸毒性，氧（氮）化应激和缺血后炎症等），从而造成神经细胞受损甚至部分死亡细胞凋亡，*终诱发大脑功能的异常。NVU是由神经元，神经胶质细胞，血管细胞（内皮细胞、周细胞、平滑肌细胞）以及基底膜共同构成，这些细胞相互作用，共同调节营养物质在细胞间质间的流动和脑血流，维持和修复髓鞘，清*代谢产物，从而实现和维持大脑的正常功能。在缺血发生时，NVU的各部分细胞发生不同程度的损伤，诱发神经元细胞的生理生化异常。部分凋亡细胞会进展为梗死灶，而梗死灶周围受损的神经细胞虽然出现了生理生化异常和功能障碍，但尚未死亡，及时低灌注可能可以改善其损伤状况使之恢复正常。这部分及时抢救仍然可以改善其功能的神经细胞一般被称为“缺血半暗带”。通过制备脑局部缺血再灌注损伤动物模型研究脑缺血再灌注损伤的作用机制已成为国内外的研究热点。上海大鼠脑梗MCAO模型
检测方法 造模完成后等待大鼠苏醒，依据Zea longa 5分制标准筛选出2分或3分的脑缺血模型进入后续实验。0分：无神经功能缺损症状，活动正常;1分：不能伸展对侧前爪;2分：爬行时出现向左转圈;3分：行走时身体向偏瘫侧倾倒;4分：不能自发行走，意识丧失。行为学指标目前常采用跳台法、避暗法、穿梭箱法来测定动物一次性被动回避反射能力 ; Y 形水迷宫实验、Morris水迷宫实验等测定动物空间分辨学习记忆能力。研究血管性痴呆、脑卒中抑郁症等可以选择旷场试验作为行为学检测指标之一。病理检测常用HE染色观察组织水肿炎症反应等，尼氏染色可以反应神经元细胞情况。南京大小鼠脑梗MCAO模型费用在实验过程中，应建立严格的质量控制体系，包括实验操作规范、数据记录和分析等环节。
动物疾病模型是一种常用的药物筛选和测试方法。该方法通过在动物体内模拟人类疾病的发生和发展过程，评估药物的疗效和安全性。具体步骤如下：1.确定疾病模型：选择与人类疾病相似的动物疾病模型，如小鼠模型、大鼠模型、猪模型等。2.设计实验方案：制定实验方案，包括药物剂量、给药途径、给药时间等。3.实施实验：根据实验方案进行实验，观察动物的生理指标、症状和病理变化等。4.分析数据：对实验数据进行统计分析，评估药物的疗效和安全性。5.结论和建议：根据实验结果得出结论和建议，为药物的临床应用提供参考。需要注意的是，动物疾病模型虽然可以模拟人类疾病，但仍存在一定的局限性。因此，在进行药物筛选和测试时，需要综合考虑动物模型的优缺点，结合其他实验方法和临床试验结果，全方面评估药物的疗效和安全性。
在实验过程中，动物的表现会被详细记录。例如，它们是否能保持平衡，是否出现跌倒，以及跌倒的频率和持续时间等。这些数据将被用于分析脑梗对动物平衡和协调性的影响。 这种实验方法有助于我们深入理解脑梗对神经系统的影响，以及可能对治*方法和康复策略的改进提供重要信息。例如，如果发现脑梗后的动物在转棒实验中的表现明显下降，这可能表明脑梗影响了动物的平衡和协调能力。这可能会引导研究人员寻找新的治*方法，以改善或恢复这些功能。实验外包团队具有丰富的实验操作经验。他们经多年的实践积累，对实验操作过程中的环节有着深入的了解掌握。
TTC染色如何测定脑梗MCAO面积-TTC（2，3，5—氯化三苯基四氮唑）是呼吸链中吡啶—核苷结构酶系统的质子受体，与正常组织中的脱氢酶反应而呈红色，而缺血组织内脱氢酶活性下降，不能反应，故不会产生变化呈苍白。将模型动物大鼠安乐死，解剖取材完整的脑组织，在-20℃速冻20min，便于切片。切片切成6片，每隔2mm切一片。将切片至于2%TTC磷酸缓冲液（PH 7.4）溶液中，用锡箔纸盖住培养皿，放入37℃温箱30min，15min后翻动脑切片，使其均匀接触到染液。实验外包团队可以根据科研人员的需求，设计并执行各种实验。定制脑梗MCAO模型TTC染色
脑缺血是指由脑内血流量突然减少或代谢速率速增所致脑血流无法满足正常代谢需求的病理状态，可导致脑损伤。上海大鼠脑梗MCAO模型
将小鼠进行呼吸诱导麻醉（异氟烷）后，以仰卧位固定于操作台上，继续维持麻醉，常规消毒，备皮，取颈部正中切口，分离右侧颈部总动脉（CCA）、劲内动脉（ICA）和颈外动脉（ECA），结扎ECA远心端，在ECA起始端留置结扎线，用动脉夹将ICA远心端、CCA近心端夹闭。在ECA远心端结扎线外离断，将ECA拉至与ICA成一条直线，于结扎线近端用显微剪剪一斜口，将MACO栓线缓缓送入，栓线通过ECA近心端结扎线进入ICA后，单道结扎ECA近心端结扎线，使栓线与血管相对固定，随即松开ICA上的动脉夹，缓慢上提ECA近心端结扎线，将栓线缓慢送入，进线至线栓刻度位置。 缺血后再灌注：栓线插入40 min后拔出，随后将ECA近心端结扎线结扎，松开CCA近心端动脉夹，碘伏消毒后逐层缝合切口。上海大鼠脑梗MCAO模型
