HE染色注意事项：1．组织切片的脱蜡步骤应彻底，否则无论进行那种染色都会发生困难。脱蜡时间要充分，若溶蜡剂使用过久应及时更换以免效率降低，若室温过低，可将溶蜡剂置于温箱中进行脱蜡。 2．苏木素染液使用一段时间后表面易出现亮晶状飘浮物，这可能是液体表面的过氧化物，必须过滤除去，以防沉渣污染组织切片。苏木素液一般染过三、四百张切片后，着色力会减弱，着色不鲜艳，呈灰蓝色时应及时更换新液。 3．染色的时间长短需依据：染剂对组织的染色作用，室温条件，切片厚薄，固定液的类别，染液的新旧而进行调节。所以在染色时必须使用显微镜观察染色程度以利掌握时间。 4．分化十分重要。分化步骤的准确也是染色成败的关键，若分化失当则必然引起染色不匀或过淡，过深等现象，因此分化后一定要镜检，观察胞核是否清晰，胞浆呈淡白色。否则需再次分化，不然一旦复染后，组织会呈紫蓝色即“蓝盖红”现象。 5．还原液不宜过浓，若碱性太强易使组织脱落故以淡为宜。 6．伊红宜淡染，复染过深胞核会不清晰，影响镜检。 HE染色试验技术及注意事项。广东推荐的HE染色公司
HE染色等常规染色，组化或是荧光优先推荐做石蜡切片。原因：石蜡切片对组织的形态保存比冰冻切片好，并且对抗原基本无影响。脂质染色（油红O染**odipy染色，尼罗红染色）必须做冰冻切片，不能做石蜡切片。以下染色必须要新鲜或冷冻组织冰冻切片：ROS染**-半乳糖甘酶染色，ATP染色，胆固醇染色。如果标本已经放在-80°冰箱冷冻了之后又想要做石蜡切片，将标本取出来千万不要解冻直接放于固定液内固定（在固定液内边解冻边固定）。组织形态结构保存完好顺序：新鲜组织立即投入固定液内固定石蜡切片＞组织-80°冷冻后投入固定液内固定石蜡切片＞新鲜组织立即投入固定液内固定冰冻切片＞组织-80°冷冻后直接冰冻切片。广东推荐的HE染色公司比较基础的病理染色HE染色。
HE染色切片中出现类似色素样的点状结晶和黑色光滑的细胞核原因：切片封片前放置在空气中时间太长，以至于二甲苯挥发切片干燥所致。对策：移去组织切片上的盖玻片和封固剂，重新处理。将切片水洗数分钟，然后重新脱水、透明、封固。封片过程中要保持组织切片的轻度湿润，尽量不要让其干燥。细胞核呈红、棕色改变原因：苏木精染色液过度氧化和切片在苏木精染液染色后返蓝不足。对策：首先，每次染色之前检查苏木精染色液的染色能力，发现氧化过度应及时更换。其次，可用流水、温水或弱碱性溶液如稀氨水、0.2%碳酸氢钠等，在苏木精染色后，给切片以足够的蓝化时间。
HE染色实验步骤：（1）样品制备：对于贴壁生长细胞，胰酶消化，调整细胞浓度约1×105/ml，滴加于盖玻片上(置于6孔板中)，培养相应时间后，取出细胞爬片，用PBS洗涤3次。（2）样品固定：95%乙醇固定20min，PBS洗涤2次，每次1min。（3）染核：苏木素染液染色2-3min，自来水洗涤。（4）分色：镜下观察，若细胞核染色过深，用1%盐酸酒精溶液分色数秒，自来水洗涤。（5）染胞质：浸入伊红染液染色1min，自来水洗涤。（6）吹干或自然晾干细胞爬片后，中性树胶封片。若细胞用4%多聚甲醛固定，则染色时间相应延长，苏木素染色12-15min，伊红5min即可HE染色观察细胞形态变化。
HE染色法的话，不能准确说出细胞器的颜色，实验记录或考试时只能说染色效果为 :细胞核蓝色，胞质、肌纤维、胶原纤维和红细胞呈深浅不一的红色。或者详细说明如下:细胞核被苏木精染成鲜明的蓝色，软骨基质、钙盐颗粒呈深蓝色，粘液呈灰蓝色。细胞浆被伊红染成深浅不同的粉红色至桃红色，胞浆内嗜酸性颗粒呈反光强的鲜红色。胶原纤维呈淡粉红色，弹力纤维呈亮粉红色，红血球呈橘红色，蛋白性液体呈粉红色。苏木精染液为碱性 ,主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色 ；伊红为酸性染料 ,主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色。科研常备实验操作之HE染色。广东推荐的HE染色公司
肺部组织HE染色如何观察。广东推荐的HE染色公司
HE染色细胞核被苏木精染成鲜明的蓝色，软骨基质、钙盐颗粒呈深蓝色，粘液呈灰蓝色。细胞浆被伊红染成深浅不同的粉红色至桃红色，胞浆内嗜酸性颗粒呈反光强的鲜红色。胶原纤维呈淡粉红色，弹力纤维呈亮粉红色，红血球呈橘红色，蛋白性液体呈粉红色。着***况与组织或细胞的种类有关，也随其生活周期及病理变化而改变。例如，细胞在新生时期胞浆对伊红着色较淡或轻度嗜碱，当其衰老时或发生退行性变则呈现嗜伊红浓染。胶原纤维在老化和出现透明变性时，伊红着色由浅变深。广东推荐的HE染色公司
