检测新鲜培养基是否有支原体污染,可以采用以下五种方案:
1. 培养法:这是一种传统且可靠的方法,通过将培养基接种到适宜支原体生长的微生物培养基或琼脂平板上,观察是否有支原体生长。这种方法较为耗时,但成本较低。
2. 荧光染色法:使用特定的荧光染料(如Hoechst 33258)对细胞进行染色,然后在荧光显微镜下观察。如果存在支原体污染,可以看到细胞表面或细胞间隙中支原体DNA的荧光染色。
3. PCR法:通过设计针对支原体特定序列的引物,利用PCR技术特异性扩增目标DNA。PCR产物通过琼脂糖凝胶电泳进行检测,如果出现条带则表明存在支原体污染。
4. 电镜观察法:使用电子显微镜直接观察培养细胞中的支原体污染情况。这种方法可以提供直观的支原体形态信息,但设备要求较高。
5. 一步法恒温支原体检测:使用特定的试剂盒,如Yeasen一步法恒温支原体检测试剂,采用等温扩增技术,通过颜色变化(由蓝紫色变为天蓝色)进行快速检测。
支原体预防的原理是什么?南京支原体检测要多久
支原体预防的实验步骤主要包括以下几个方面:
1. 无菌操作技术:在细胞培养过程中,严格遵守无菌操作规程,包括穿戴适当的实验服、手套,使用无菌工具和耗材。
2. 环境控制:保持实验室环境清洁,定期消毒工作台和实验室表面,使用层流罩或生物安全柜进行细胞操作。
3. 细胞培养基和试剂的无菌过滤:所有加入到细胞培养基中的试剂和补充物,如血清、抗*素等,都应通过无菌过滤以去除支原体。
4. 细胞培养基和试剂的检测:在添加到细胞培养物之前,对新的细胞培养基和试剂进行支原体检测,以确保它们没有被污染。
5. 定期检测:即使采取了预防措施,也应定期对细胞培养物进行支原体检测,以确保及时发现并处理潜在的污染。
6. 避免交叉污染:避免从一个细胞培养物到另一个的交叉污染,使用的移液器和工具,避免在不同细胞培养物之间重复使用。
7. 细胞培养物的筛选:使用已知无支原体污染的细胞株进行实验,或者在开始实验前对细胞株进行筛选。
8. 使用预防性试剂:在某些情况下,可以在细胞培养过程中添加特定的预防性试剂,如支原体预防剂,以降低污染风险。
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细胞被支原体污染后可能会出现以下几种情况:
1. 生长速度变慢:支原体污染的细胞生长速度可能会减慢,甚至停止生长。
2. 形态改变:部分细胞可能会变圆,从培养瓶壁脱落。有些细胞在支原体污染后,形态变化可能不明显,但有些细胞可能会出现体积增大、细胞碎片增多等现象。
3. 培养液pH变化:支原体污染的细胞可能导致培养液pH值变化明显,更换培养液后几小时内变酸(颜色变黄)。
4. 细胞间隙出现膜状沉积:在某些情况下,细胞与细胞间隙可能出现膜状沉积,影响细胞的正常生长和传代。
5. 细胞功能受损:支原体污染可能会影响细胞的代谢和功能,如影响细胞蛋白质、DNA、RNA的合成。
6. 染色体畸变:支原体污染可能会导致细胞染色体断裂、数目减少,出现双着丝点染色体、环状染色体等异常。
7. 免疫细胞产量受影响:对于巨噬细胞等免疫细胞的培养,支原体污染可能会抑制干扰素的合成和降低其活性。
8. 细胞培养环境的污染:污染的细胞可能成为实验室的污染源,影响工作区域、培养箱和液氮罐等。
9. 实验结果的不确定性:使用被支原体污染的细胞进行实验可能会得到不准确的结果,影响科研的可靠性。
细胞培养中,需要去除支原体的污染:支原体污染是细胞培养中 普遍的问题之一,细胞库中或正在使用的细胞中,支原体的污染率约为15%-35%。并对培养细胞的生理和代谢造成诸多影响:
01/ 争夺营养 – 阻碍细胞生长和增殖
02/ 改变蛋白质、RNA 或 DNA 合成的水平
03/ 改变基因表达、细胞信号传导和形态
04/ 损害膜和细胞器
05/ 导致突变和染色体变化
06/ 时间、金钱和有价值的细胞丢失,耽误研究时间
07/ 实验结果的不可靠性,实验结果的重复性 降低
08/ 生物安全问题
支原体去除的实验步骤?
支原体预防的主要成分通常是指用于预防支原体污染的抗*素或化学试剂。在细胞培养中,预防支原体污染的措施包括在培养基中添加抗*素,以及采取其他预防措施来保持实验室环境的清洁和无菌操作。以下是一些用于预防支原体污染的主要成分:
1. 四环素类抗*素:这类抗*素对支原体具有抑制作用,常用于治*和预防支原体感*。
2. 大环内酯类抗*素:例如罗红霉素、克拉霉素、阿奇霉素等,用于治*肺炎支原体感*。
3. 喹诺酮类药物:如氧氟沙星、司帕沙星等,也用于治*肺炎支原体感*。
4. 其他抗*素:例如氨基糖苷类、氯霉素等,对支原体有较小的抑制作用。
对于同一个样品,为什么PCR结果为阳性,而一步法恒温检测试剂盒结果为阴性?
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细胞培养中支原体检测出现假阳性结果可能由以下原因引起:
1. 扩增产物污染:PCR扩增产生的大量DNA拷贝若未妥善处理,极微量的污染就可能导致假阳性结果。
2. 引物设计不当:引物设计不够特异性,可能会与非目标序列发生反应,导致非特异性扩增。
3. 试剂质量问题:使用的dNTPs、引物、DNA聚合酶等试剂质量不佳,可能引起非特异性扩增或假阳性结果。
4. 操作技术问题:实验操作不规范,如混合样本、标签错误或样本标识不清等,可能导致假阳性结果。
5. PCR反应条件设置不当:不恰当的PCR反应条件,如温度和时间选择不当,可能导致非特异性扩增。
6. DNA污染:PCR环境中的DNA污染会干扰结果,导致假阳性
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