HE染色伊红着色淡分析及应对原因：（1）伊红染液的pH值可能大于5；（2）蓝化液残留过多；（3）切片太薄；（4）切片经伊红染色后在乙醇脱水时间过长。对策：检查伊红染液的pH值，如果必要的话，用乙酸将其调节在4～5之间，从而使伊红染色彩艳丽。确保每次蓝化步骤完成后，使用的弱碱性溶液被充分洗去，玻片上没有残留的弱碱性溶液。检查切片的厚度。脱水时不要让切片在低浓度乙醇停留时间过长，因为含水多的低浓度乙醇会将伊红的颜色分化掉。HE染色观察细胞形态变化。黑龙江比较好的HE染色公司
HE染色样本组织固定与切片：首先将组织样本进行常规的石蜡包埋。在模具中加入液态石蜡，将待包埋的组织样本放入石蜡中，确保组织位置规整。补充少许液态的石蜡后，进行降温冷冻，使石蜡变为固态达到组织固定的效果，然后使用石蜡切片机进行切片，厚度在４-８um左右。将切完后的组织切片放入载玻片上使用40℃温水浸泡使组织充分伸展。组织样本脱蜡：将待测组织样本切片放于二甲苯中，充分浸泡10min，浸泡完后更换二甲苯继续浸泡10min，目的是使用二甲苯将切片中的石蜡溶解，这样可以在进行染液染色的时候，染液可以充分进入组织种，同时，二甲苯还可以起到透明的作用，使切片更容易观察。陕西HE染色服务脾脏组织HE染色如何观察。
HE染色多聚甲醛保存组织的注意事项：多聚甲醛放置过久其中的醛基可能会被氧化为酸，使溶液pH降低，从而影响染色。不同细胞或组织样品所需的固定时间有所不同，应当根据细胞或组织的种类以及组织块的大小来调整固定时间。多聚甲醛虽然作用温和，但能硬化组织，固定时间过久会导致组织变脆，切片时易碎。因此固定时间通常不宜超过24小时。多聚甲醛可长期存在于固定过的细胞或组织样品中，固定完成后用适当的洗涤液或水冲洗数小时仍会有残留，因此后续实验结果如果受醛基影响，须尽量洗去残留的多聚甲醛。醛基与抗原蛋白的氨基交联形成羧甲基，使抗原决定簇的三维构象出现空间障碍。分子间交联形成的网格结构可能部分或完全掩盖某些抗原决定簇，使之不能充分暴露，可造成假阴性的染色，影响免疫组化结果。因此，4%多聚甲醛固定的细胞或组织样品在进行免疫组化检测时，有时需要对抗原先进行修复，然后才能进行免疫染色等后续操作。
HE染色伊红溶液中加入少量的冰醋酸(一般小于10%就行)，可改变组织等电点，促进伊红与胞浆蛋白质结合，其本身不参与染色的反应。当苏木素染色效能极高，很短时间就导致核浆共染时，可适当地添加冰醋酸(一般不超过2%)，抑制苏木素染色效能，方便控制染色时间，同时也能提高苏木素染色的清晰度。现在有商用的HE染色液卖，但是质量参差不齐。如果课题组较大，完全可以自己配制，效果也挺好。配制为乙酸浓度5%-7.5%和盐酸浓度为0.5%-1%的苏木素溶液放置一周，即可完全成熟，染色效果好，氧化膜和结晶都很少(一般苏木素中酸度越低越容易产生氧化膜和结晶，这也是提示更换苏木素的标志之一)。HE染色(脱蜡、水化、染色、脱水、封片) - 实验方法。
HE染色分化作用：染色后，用某些特定的溶液将组织过多结合的染色剂脱去，这个过程称为分化作用，所用的溶液称为分化液。在HE染色中用0.5%盐酸乙醇作为分化液，因酸能破坏苏木精的醌型结构，使组织与色素分离而褪色。经苏木精染色后，必须用0.5%盐酸乙醇分化，使细胞核过多结合的苏木精染料和细胞浆吸附的苏木精染料脱去，在进行伊红染色，才能保证细胞核与细胞浆染色的分明。因此，在HE染色中分化是极为关键的一步。返蓝作用：分化之后，苏木精在酸性条件下处于红色离子状态，呈红色，在碱性条件下处于蓝色离子状态，呈蓝色。组织切片经0.5%盐酸乙醇分化后呈红色或粉红色，故分化之后，立即用水出去组织切片上的酸而终止分化，再用弱碱性水（0.2%氨水）使苏木精染上的细胞核呈现蓝色，这个过程称为返蓝作用或蓝化作用。另外用自来水浸洗也可使细胞核返蓝，但所需时间较长。HE染色中固定液如何配置。黑龙江值得信赖的HE染色服务
肺部组织HE染色如何观察。黑龙江比较好的HE染色公司
HE染色在**染色中的应用，小细胞肺*是肺*中分化程度比较低、恶性程度比较高的一种恶性**，生长迅速，转移较早，五年存活率*为1%-2%，预后非常差。其小细胞肺***细胞HE染色的特征，主要表现为组织结构，包括巢状、小梁状、实性片状，常有菊形团形成，*巢周围的瘤细胞呈栅栏状排列，*细胞较小，一般小于三个静止的淋巴细胞，呈圆形、卵圆形或短梭形，胞质稀少，胞界不清，核染色质呈细颗粒状，核仁缺乏或不明显，核分裂象每十个高倍视野大于十一个，常见大片状坏死。黑龙江比较好的HE染色公司
