WISTAR大鼠主要用途：多用于肿块瘤体、免疫、药理、内分泌。简介：1907年由美国维斯塔尔(Wistar)研究所育成，现己遍及世界各国的实验室。我国从日本及前苏联引进，是引进较早、使用较广阔、数量较多的大鼠品系之一。特点：远交系大鼠，头部较宽、耳朵较长、尾的长度小于身长。性周期稳定，繁殖力强，产仔多，平均每胎产仔在10只左右，生长发育快。10周龄时雄鼠体重可达280～300g，雌鼠达170-260g。性情温顺。对传染病的抵抗力较强。自发性肿块瘤体发生率低。目前各地饲养的Wistar大鼠的遗传状况差异较大。卡文斯实验鼠以专业、高效的服务支持全球生命科学研究。高血压大鼠构建
一些品种的小白鼠非常经典，它们的“科研生涯”可追溯到数百代前的祖先，造成了大家对实验鼠的刻板印象。其实，各种毛色的老鼠都在为科学献身。甚至，随着研究深入，科学家对实验鼠的要求走向多样化、精细化。从一开始的杂交、近交培育，到随机诱导基因突变，再到现在的精细基因编辑，百变实验鼠，为了人类的科学事业，承担了许多本不属于它们的人类疾病。全球生物研究处于快速发展阶段，包括实验鼠在内的实验动物行业是生物研发的关键平台，但是目前相关品系开发及配套设施仍然落后于市场需求，无论是生命科学研究还是新药开发，在此方面仍然面临无鼠可用的局面。实验鼠能够契合市场需求，具有良好的市场前景。江苏卡文斯作为常州区域实验鼠行业重点企业欢迎各位领导莅临！高血压大鼠欢迎选购卡文斯实验鼠在心血管疾病研究领域具有优异建模能力。
腹腔注射腹腔注射虽然简单，也有翻车的危险。一针下去，扎到内脏，呜呼哀哉。先将小鼠腹腔注射操作要点总结如下：抓鼠后选择低尾高位的位置；选择下腹部腹中线进针；小于60度进针有落空感；回抽未见血后推针，旋转半圈拔针。腹腔注射适合刺激性小的水溶性药物的用药，利用腹腔膜及大小网膜血管丰富，吸收面积大等特点，使药物快速入血。注意事项：1、腹腔注射只宜用等渗药液（如5％葡萄糖液、0.9％生理盐水）适当配无刺激性的药物（如肌苷、维生素B1、维生素C），而且注射量不宜太大，注射药液温度应与体温相近。2、注射时，小鼠头部要呈低位，使内脏向胸部侧偏移，针头不宜过长，以防止刺伤肠道、膀胱或其它内脏身体部位。3、进针时不要犹豫，切勿为避免刺伤身体部位，针头刚插入皮肤就向上挑起，此时针头极有可能还没刺破腹腔壁，只是将液体注射在腹部皮下。
由于与人类基因有99%的相似性，小鼠可以被用于衰老、免疫、血液疾病、神经系统、感官疾病以及代谢性疾病的研究。也许你会觉得这些很抽象很难以理解，那么就让我借助“小鼠模型”来解释一下。什么是小鼠模型？与人类和其他哺乳动物一样，小鼠也会患有免疫、内分泌、神经、心血管、骨骼和其他复杂生理系统方面的疾病，例如病情ai变性症状、血压高出正常、糖尿病、骨质疏松症和青光眼等。于是科研工作者就试图通过遗传技术对小鼠进行基因编辑，从而建立起患有“单一”疾病的小鼠以帮助人类进行疾病研究。这些患有“单一”疾病的小鼠，就是小鼠模型。目前可用的小鼠模型不仅限于病情ai变性症状方面，糖尿病、肥胖、失明、亨廷顿氏病（舞蹈症）和焦虑症方面都建立了相应的小鼠模型。现如今，美国的杰克逊实验室（JacksonLaboratory）已经向全世界分发了2700种实验鼠，而这些实验鼠所首的疾病模型，正在帮助全世界的科学家进一步研究那些与人类息息相关的疾病。常州卡文斯实验鼠饲养环境恒温恒湿，减少环境应激影响。
基于CRISPR/Cas9技术，我们拥有独有的全基因组单/多位点分析设计系统、高通量的gRNA载体组装技术、高效的遗传转化技术和基于云端的测序结果自动化分析体系；具有单基因/多基因敲除、短片段/长片段删除、单碱基/多碱基替换敲入和条件性敲除等多面的基因组编辑技术。特点：简单——只需提供基因ID或序列快速——快50个工作日提供Founder小鼠，全年提供全程服务高效——特有的技术，实现单基因、多基因敲除，条件性敲除，大片段（例如整个外显子区域或者lncRNA）敲除，DNA片段定点敲入（包括定点突变、GFP等标签Tag的敲入）卡文斯实验鼠品系丰富，满足不同科研项目的需求。B/T/NK免疫细胞缺失小鼠技术推广
对实验小鼠的肠道绒毛进行电镜观察，发现益生菌干预组的绒毛长度更长。高血压大鼠构建
腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。高血压大鼠构建
