实验动物常见的给药物使用方法式有:口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结:1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定,注意头一定要固定好,头和躯体要保持一条直线,并且灌胃时使小鼠成竖直位,头向上。2.把握要领,动作尽量迅速,减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量:0.1ml/10g体重:一只20g的小鼠,一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线,太松会动,太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针,抵达咽部会有抵触感,小鼠会有吞咽动作,此时阻力丧失,可继续下行。卡文斯实验鼠在行为学实验中表现稳定,数据可靠。DBA/1实验小鼠

C57BL/6J小鼠主要用途:常被认作“标准”的近交系,为许多突变基因提供遗传背景。是学、生理学、免疫学、遗传学研究中常用的品系。简介:1921年立特(Little)用艾比·拉特洛坡(AbbyLathrop)的小鼠株,雌鼠57号与雄鼠52号交配而得C57BL1937年从C57BL分离出C57BL/6和C57BL/10两个亚系。1985年从Olac引到中国医学科学院实验动物研究所。特点:近交系小鼠,毛色黑色;补体活性高;较易诱发免疫耐受性;对结核杆菌敏感;干扰素产量高。是学、生理学、免疫学、遗传学研究常用的品系。乳腺自然发生率低,化学物质难以诱发乳腺和卵巢。12%有眼睛缺损;雌仔鼠16.8%,雄仔鼠3%为小眼或无眼。用可的松可诱发腭裂,其发生率达20%。对放射物质耐受力中等;补体活性高;较易诱发免疫耐受性。对结核杆菌敏感。对鼠痘病毒有一定抵抗力。干扰素产量较高。嗜酒精性高,肾上腺素类脂质浓度低。对百日咳组织胺易感因子敏感。B/T免疫细胞缺失小鼠技术推广卡文斯实验鼠以稳定的遗传背景和高效的疾病模型著称。

小鼠的生殖生理特性:小鼠性成熟早,一般36-42日龄即性成熟。一般雌鼠交配后10-12小时,在阴道口可见1个白色、绿豆大小的阴道栓,防止精子倒流,以提高受孕率,可以作为交配的标志。小鼠性周期为4-5天,一个性周期可以分为4个阶段。发情后2-3小时可排卵,根据品系不同一次可排10-23个卵子。繁殖能力强,全年均可繁育。有产后发情的特点,在分娩后24小时内排卵,此时交配即可受孕,俗称“血配”。如何根据外观判断小鼠健康状况:食欲旺盛,眼睛有神,反应敏捷,体毛光滑,肌肉丰满,活动有力,身无伤痕,尾不弯曲,天然孔腔无分泌物,无畸形,粪便黑色呈麦粒状。
品系名称:GK(I型糖尿病大鼠)品系编号:C000124品系描述:GK大鼠新生期血糖水平正常,成年期发展为显性糖尿病表现为轻度空腹***、明显的餐后***、高胰岛素血症、胰岛素抵抗、葡萄糖刺激的胰岛素分泌受损,不伴酮症。雄性和雌性发病率相同,但雌性血糖浓度稍低于雄性。雄性大约在14-16周龄时出现I型糖尿病,即出现了血糖升高、心率降低、心肌萎缩等症状,与人类I型糖尿病心脏病进展极为相似,并有***的心肌肥大、间质纤维增生和持续的心肌细胞凋亡。应用领域:GK大鼠是非胰岛素依赖型(NIDDM)、非肥胖自发性、I型糖尿病动物模型。常州卡文斯实验鼠的基因编辑模型高效,助力生命科学领域突破性研究。

品系名称:ApOE(明星产品)品系编号:C000113品系背景:C57BL/6J品系描述:APOE:载脂蛋白E缺失(ApOE-/-)小鼠对富含胆固醇的脂蛋白***障碍,大量脂类不能及时有效的***而积聚在血液中,使得血液中的各种相关脂类含量异常升高而在血管壁沉积,血浆总胆固醇、甘油三酯TG、低密度脂蛋白和极低密度脂蛋白水平增高,并促使泡沫细胞形成,堆积于血管壁内,因此普通饮食喂养的Ap0E-/-小鼠在幼龄时即表现为血脂代谢素乱以及自发性A5,并随年龄增长逐渐加重。APOE突变纯合小鼠血浆总胆固醇水平比正常小鼠高,3月龄可在临近大动脉附近发现脂肪纹,病变损伤随年龄增加而增大,发展病程中脂质少但细长细胞增多典型的***病变前期的表现。13月龄小鼠的***病变从颈动脉、心脏和主动脉扩展到肾动脉和髂分叉。17个月以上ApOE缺陷小鼠脑内将出现脂瘤性纤维瘤,同时还有脂质小球和泡沫细胞。应用领域:***地应用于食源性***、高胆固醇血症、高甘油三酯血症、血管缺陷、脂质代谢、阿尔茨海默症(老年痴呆症)、行为和学习缺陷等研究。常州卡文斯实验鼠以稳定的遗传背景和高效的疾病模型著称。Wistar-Kyoto小鼠公司排名
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腹腔注射操作步骤:1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上,提其尾巴中部,水平偏下往后轻拉,小鼠爪子会自然会抓住笼子,此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛,比较好是抓在小鼠的耳朵处,这样可以更好固定小鼠的头部,以防被咬。但是,切记力气不要过大,容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定,这样就可以将小鼠整个躯干固定好,注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置,如果小鼠躯干不能保持竖直,很容易扎到脏器,引起出血,影响实验。2.注射抓取小鼠后,应腹部向上,头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位,避免扎伤。右手持注射器,插入小鼠腹部,注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处,缓慢以45度左右进针,进针深度小于1cm,进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针:为了防止漏液,轻微旋转针头,再缓缓拔出。在实验前,准备酒精棉球,注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用,避免交叉染上。此外,注射前,也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤,可以明显辨别药物是否注射到腹腔,如果看到鼓包,就是注射到皮下了。DBA/1实验小鼠