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糖类染色：糖类从组织化学技术角度来分，可分为多糖、中性粘液物质、酸性粘液物质、粘蛋白及粘脂质。多糖主要指糖原，它是一种胶样液态存在于肝细胞、骨骼肌、心肌等处。因糖原在肝脏及心肌疾患及某些的病变中分布和量都有一定改变，故糖原的染色在临床病理诊断上具有重要意义。（1）肝及心肌糖原沉着症的诊断：糖原染色显示在肝或心肌细胞内有大量糖原存在即可确诊。（2）糖尿病性肾小球硬化症或血管病的诊断。（3）高雪氏病与尼曼——匹克氏病的鉴别：前者为阳性、后者为阴性，做此染色较易鉴别。（4）骨内骨外尤文氏肉瘤的诊断：此瘤 80%细胞内有较多糖原，糖原染色为阳性，所以糖原染色为阳性（大多数细胞）可以协助诊断。（5）腺泡状软组织肉瘤与化感瘤：前者棒状小体糖原染色为阳性。该依据切片厚薄、组织的类别等决定。北京品牌糖原染色试剂盒厂家直销

特殊染色方法选择应遵循：染色结果对比鲜明、结果易保存、阳性突出的染色方法；突出的阳性结果在于所选择方法表达的色调及如何进行背景的复染。结果能够长时间保存、不褪色对于后续的调阅、科研、论文均较为有利。如显示淀粉样物质，甲基紫染色法虽然流程较为简单，但结果不易保存，阳性对比度相对不突出；刚果红染色法阳性结果明显，长时间保存不褪色，流程简便，更是实用的方法。如显示弹性纤维，地衣红染色染液虽配制较方便，但结果对比度相对欠佳，与其他几个染色法相比，多不选择使用。糖原染色试剂盒厂家现货通过显微镜对组织内的生物化学成分进行定性、定位、定量研究。

注意事项：染色时：①染色时必须严格按照染色操作说明书进行染色。②在染色过程中，前一个染液浸染完成后，在进行下一个染液的步骤之前，必须彻底充分水洗，使前一个染液冲洗干净后再进行下一步骤。③ 每次滴加染液前，务必吸干组织上多余的水分，避免多余的水把染液稀释了，造成染色不佳。④在滴加染液时，务必使染液完全覆盖组织，但不能溢出圈外，避免浪费试剂。在染色时，用有色铅笔在组织周围划一个圈，这样在滴加染液时就不会使染液溢出。

PAS染色试剂配制及染色方法：1.材料与方1.1 实验材料新鲜小白鼠肝脏、肾脏标本各30例，均来自我室实验材料。1.2 主要试剂1.2.1 AAF固定液又称酒精醋酸福尔马林混合固定液，其配方：无水乙醇80mL，冰醋酸5mL、甲醛10mL。1.2.2 Carnoy固定液 氯仿300mL，冰醋酸100mL，95％酒精600mL。1.2.3 过碘酸溶液 0.5g过碘酸（HIO）溶于100mL蒸馏水或者70％酒精溶液中，或者按如下配方配制：过碘酸0.8g，95％乙醇70mL，醋酸钠0.27g，水20mL。待溶解后置于4℃冰箱避光保存。1.2.4 无色品红液（Schiff氏液） 在三角烧内加入蒸馏水500mL，煮沸后，在保持微沸的情况下，加入碱性品红2.5g，并不断摇动约5min（勿使之沸腾），使碱性品红彻底溶解（溶解液为深红色）。冷却到50℃时，过滤，加入1N盐酸50mL，再待冷却至25℃时加入偏重亚硫酸钠2.5g，塞住瓶口，摇动容器以充分混合（此时颜色明显变淡），然后避光放置或冰箱内24h。糖原累积病诊断和研究 ，糖尿病的诊断和研究 ，用于某些的诊断等。

糖原染色在使用过程中需要注意以下几个方面：Schiff氏染液的配制是关键，尤其是偏重亚硫酸钠的质量，打开应是粉剂，且带有硫的气味，若成团或没有气味，则不能用，配制时使用的容器、药勺、称药天平与称药纸等必须洁净、无污染。新配制好的Schiff剂为无色透明液体[1]，配好后可分成小份置于-20℃保存，用时取一份恢复到室温即可。沈洪武等通过对比染色发现，冷冻保存1年的Schiff液的染色结果与新鲜配制的染色结果一致[5]。0.5％～1％高碘酸（pH值在3.0～5.0之间），环境温度以不高于20℃为宜，室温高时氧化时间适当缩短；如果染色时环境温度较高且高碘酸作用时间长，可使某些物质成分发生非特异反应，使染色结果出现假阳性。因此，室温较高时可适当缩短反应时间。细胞核、染色体以及基因表达的研究。北京品牌糖原染色试剂盒厂家直销

生物膜与细胞器的研究。北京品牌糖原染色试剂盒厂家直销

糖原染色（PAS）：（1）原理：过碘酸将血细胞内的糖原氧化，生成醛基。醛基与雪夫液中的无色品红结合，形成紫色化合物，定位于细胞质中。（2）操作方法：干燥涂片，滴加甲醛固定液固定10分钟，流水冲洗，晾干。滴加过碘酸溶液作用20分钟，流水冲洗，晾干。滴加雪夫液作用60分钟，流水冲洗，晾干。滴加甲基绿溶液复染10分钟，流水冲洗，晾干镜检。（4）临床意义：根据染色阳性程度和阳性物形态鉴别主要用于急性淋巴细胞白血病和急性非淋巴细胞白血病鉴别，还有助于红白血病与巨幼细胞贫血和溶血性贫血的鉴别诊断。北京品牌糖原染色试剂盒厂家直销

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