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糖原染色的原理与操作方法是什么：（1）原理：过碘酸将血细胞内的糖原氧化，生成醛基。醛基与雪夫液中的无色品红结合，形成紫色化合物，定位于细胞质中。（2）操作方法：干燥涂片，滴加甲醛固定液固定10分钟，流水冲洗，晾干。滴加过碘酸溶液作用20分钟，流水冲洗，晾干。滴加雪夫液作用60分钟，流水冲洗，晾干。滴加甲基绿溶液复染10分钟，流水冲洗，晾干镜检。细胞的组织化学方法，是研究细胞成分常用的方法之一。它是利用化学试剂与细胞内的某些物质进行化学反应，从而在细胞局部形成有色沉淀物，再通过显微镜对组织内的生物化学成分进行定性、定位、定量研究。一般厚度不超过3mm，大小不超过5×5m㎡。湖南如何使用糖原染色试剂盒厂家批发价

染色的原理和临床意义：原理：粒细胞和单核细胞胞浆中含有的过氧化物酶（peroxidase，POX）能将底物过氧化氢分解，产生新生态氧，它将四甲基联苯胺氧化为联苯胺蓝。联苯胺蓝自我脱氢氧化，显棕色四甲基苯醌二胺，再加入亚硝基铁**与联苯胺蓝结合，可形成稳定的蓝色颗粒，定位于细胞浆内酶所在的部位。临床意义： 临床上主要用于急性白血病类型的鉴别：急性淋巴细胞白血病原、幼淋巴细胞POX染色均呈阴性反应；急性粒细胞白血病　原粒细胞POX染色呈局灶分布的阳性反应；急性早幼粒细胞白血病　颗粒增多的早幼粒细胞POX染色呈强阳性反应；急性单核细胞白血病原、幼单核细胞POX染色多呈细小颗粒弱阳性反应。北京咨询糖原染色试剂盒单价自早幼粒阶段以后的粒细胞和幼单核细胞可呈弱阳性反应。

糖原染色在使用过程中需要注意以下几个方面：PAS染色时需于暗处加盖反应，染色时间10～20min（染色时间长短取决于试剂的质量和环境温度，SO浓度高，染色时间适当缩短；环境温度高，染色时间也应适当缩短，反之则需适当延长反应时间）。染色过程中不能接触伊红，以免造成颜色误差[4]。作糖原染色时，较好作消化对照，即取两张连续切片，其中一张脱蜡至水后，用1％淀粉酶于37℃消化30min，水洗后与不经消化处理的切片一起置0.5％高碘酸液氧化，如经消化处理的切片染色阴性，不经消化处理的切片染色阳性，即肯定为糖原[6]。偏重亚硫酸钠（钾）溶液配置后，不能保存，因此，必须现配现用，用过一次即应废弃。各种试剂必须是化学纯或者分析纯。器皿、染色缸必须洁净而干燥。

糖原染色试剂盒。含乙二醇基的多糖经过碘酸氧化，产生醛基，与雪夫（Schiff）试剂中无色品红结合，形成紫红色沉淀物定位于含糖原的胞浆中。该反应称为碘酸-雪夫（PAS）反应。（1）雪夫液配制：碱性品红1g溶于200ml沸水中，冷却60℃时过滤，加1mmol/L盐酸20ml，再冷却至25℃左右，加偏重亚硫酸钠（Na2S2O5）2g，混合后放棕色瓶中，置暗处24h，无色即可放冰箱中保存，呈微红色，则加活性炭1～2g，吸附过滤使成无色液体，放冰箱中保存。若溶液变红，即不能再用。（2）10g/L过碘酸水溶液：过碘酸（HIO4·2H2O）1g,加蒸馏水至10ml。溶解后盖紧放冰箱备用，一般可用3个月，变黄则失效。通过显微镜对组织内的生物化学成分进行定性、定位、定量研究。

糖原染色在使用过程中需要注意以下几个方面：尽可能选取小块新鲜组织及时固定。糖原易溶于水，在酶的作用下很容易分解葡萄糖，更易溶于水，固定之前决不能用水或生理盐水等浸洗。应避免用水溶性固定液，宜采用酒精性固定液，如Carnoy液，能较好地保存糖原，但有使糖原流动到细胞一侧的现象，多数人认为是由于固定剂把细胞内的糖原推向固定剂对组织浸透的方向而造成。其他组织应用中性福尔马林固定为佳。组织在4℃左右温度内固定与保存，是针对糖的性质和避免糖原溶于水而采取的相应措施。乙醇能沉淀白蛋白、球蛋白，亦能**白和糖原沉淀，但仍可溶于水，因此较好不单独使用乙醇固定，以乙醇为溶剂的混合固定液固定为佳。为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。北京哪家提供糖原染色试剂盒销售厂家

本试剂盒适用于骨髓细胞涂片，血液细胞涂片。湖南如何使用糖原染色试剂盒厂家批发价

糖原染色：方法固定液Carnoy固定液：纯酒精60 ml　冰醋酸10ml氯仿 30ml,也可以选用75%酒精配制1) 过碘酸酒清夜配法: 过碘酸(HIO .2H O) 0.4g　95%酒精 35ml　M/5醋酸钠(2.72g+蒸馏水100ml) 5ml蒸馏水10ml 保存于冰箱内,用棕色瓶,可用两周.2)Schiff氏液: 0.5克碱性品红加入100毫升蒸馏水中,时时摇动三角瓶5分钟,使之充分溶解.冷却至50℃后过滤加入10毫升1N盐酸.冷却至25℃,加入0.5-1克偏重硫酸钠,在室温中至少静置24小时,然后密封冰箱保存.3)Schiff氏酒**配置　Schiff氏液 11.5ml1NHCI 0.5ml纯酒精 23ml4)亚硫酸水 1%偏重亚硫酸蒸馏水180ml的树胶溶解。湖南如何使用糖原染色试剂盒厂家批发价

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