目前的主流观点认为,外泌体的产生过程为:细胞膜内陷,形成内体(endosome),再形成多泡体(multivesicularbodies,MVB),较后分泌到胞外成为外泌体。外泌体中携带有母细胞的多种蛋白质、脂类、DNA和RNA等重要信息。外泌体较早见于1981年,EGTrams等在体外培养的绵羊红细胞上清液中发现了有膜结构的小囊泡,并命名为exosome。对于外泌体的作用,当时推测为细胞排泄废物的一种方式。1996年GRaposo等发现类似于B淋巴细胞的免疫细胞也会分泌抗原呈递外泌体(antigenpresentingvesicle),所分泌的外泌体可以直接刺激效应CD4+细胞的抗一些病症反应。2007年HValadi等进一步发现细胞之间可以通过外泌体中RNA交换遗传物质。随着有关外泌体研究越来越多,研究者发现它普遍参与了机体免疫应答、抗原呈递、细胞分化、一些病症生长于侵袭等各种生物过程中。目前人们多采用超速离心、免疫磁珠、超滤、沉淀或试剂盒等方法实现外泌体的提取分离。外泌体的提取、分离方法:开发高效、快速、稳定,并且保持外泌体结构和生物功能完整性的方法。温州外泌体提取试剂厂家推荐
外泌体(Exosome)是细胞主动分泌的囊泡样小体,大小均一,直径30-200nm,密度1.10-1.18g/ml,来源普遍,几乎所有细胞都可分泌,在血液,尿液,唾液,脑脊液,腹水,乳汁等体液中普遍分布。外泌体较早在1986年发现于培养的绵羊红细胞上清液中。1996年,研究者发现外泌体作为抗原呈递因子参与T细胞依赖的抗一些病症反应,开启了外泌体蛋白研究的新天地。2013年诺贝尔生物/医学奖解答了细胞如何组织其内部较重要的运输系统之一——囊泡传输系统的奥秘。超离法因操作简单,获得的囊泡数量较多而广受?欢迎,但过程比较费时,且回收率不稳定,纯度也受到质疑。宁波正规外泌体提取试剂报价外泌体作为内源性的天然药物载体有着独特的优势,表面由脂质和蛋白质组成。
专利申请利用分离培养人尿液来源细胞并收集培养基来进行体外培养,直接把外泌体从尿液中沉降下来,无须分离培养人尿液来源细胞并收集培养基。人尿液来源细胞的外泌体的获取方法,是首先分离培养人尿液来源细胞并收集培养基,将人尿液来源细胞的培养基通过0.22微米滤膜过滤,以去除大的细胞残片以及其它杂质;然后离心除去细胞器,留取上清;再使用可截留100KD分子量的膜,通过离心截留上清中的外泌体,截留完成后,使用PBS对膜进行洗脱即得到外泌体浓缩液。
外泌体的提取分离:1、超滤离心。由于外泌体是一个大小约几十纳米的囊状小体,大于一般蛋白质,利用不同截留相对分子质量(MWCO)的超滤膜对样品进行选择性分离,便可获得外泌体。超滤离心法简单高效,且不影响外泌体的生物活性,是提取细胞外泌体的一种新方法。2、磁珠免疫法。外泌体表面有其特异性标记物(如CD63、CD9蛋白),用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合,即可将外泌体吸附并分离出来。磁珠法具有特异性高、操作简便、不影响外泌体形态完整等优点,但是效率低,外泌体生物活性易受pH和盐浓度影响,不利于下游实验,难以普遍普及。外泌体提取:基于聚合物的沉淀技术。
外泌体的提取、分离方法:超高速离心法。常用的是超高速离心法,该方法是被誉为分离外泌体的“金标准”。该方法利用离心力从细胞培养液或生物流体获得外泌体,经过400×g、2000×g、10000×g的低速离心,除去细胞及大的细胞分泌物;较后超高速100000×g离心得到外泌体[12]。超高速离心因操作简单,不需要复杂的技术支持,并且成本相对较低而被普遍使用。但是该方法耗时、产率低,得到的外泌体的数量和质量很大程度上受转子的类型、转子沉降角度等因素影响,其中较主要的问题就是差速离心法获得的沉淀物是外泌体,但也会有其他的囊泡、蛋白质或蛋白和RNA的聚集体。外泌体的提取、分离方法:免疫亲和层析法。宁波正规外泌体提取试剂价格
外泌体提取:超滤膜也可用于分离外泌体。温州外泌体提取试剂厂家推荐
外泌体(exosomes,Exos)是细胞分泌的一种膜囊泡,因其可以将供体细胞的信息通过其携带的蛋白质、mRNA、miRNA等传递到受体细胞,实现细胞之间的信息交流及物质交换,并且可以作为药物载体转运药物而引起科学家的普遍关注(Fig1)。外泌体作为内源性的天然药物载体有着独特的优势,表面由脂质和蛋白质组成,使其可以穿透许多生物膜,提高药物的运输效率和靶向性,可以稳定存在于血液中,纳米级尺寸明显增强药物在瘤部位的渗透滞留效应(permeabilityandretentioneffect,EPR)。目前,许多抗药物、基因药物及药物均被成功载入外泌体。但是由于没有较好的外泌体分离纯化和载药的方法,使得其作为药物载体的应用受到限制。温州外泌体提取试剂厂家推荐
外泌体的提取方法学规范、统一定量及鉴定等。关于外泌体的提取有超速离心、试剂盒、超滤法、蔗糖密度梯度离心等,然而各种方法均有其利弊。超速离心法是目前外泌体相关文章中的主流方法,由于离心步骤繁琐,费事费力,而且步骤多导致实验中容易污染,且损耗量大,使得较终回收的外泌体不稳定。而且对于抽提细胞上清来说,更是极为不请便,试想用提取300ml的上清需要6个50ml离心管,无论是过滤还是后续的每一步的离心去沉淀,都具有操作极其不便的缺点,总之非常麻烦。而超滤法存在外泌体会堵塞膜孔,造成浓缩效率低,浓缩管重复利用差,甚至堵塞在膜孔的外泌体还可能会粘连成团,造成损失及较后的数据有误差,对于后续实验也有影响无法...