宁波细胞高效转染试剂

转染方式：细胞由带负电荷的磷脂双分子层构成，这对大分子物质来说是个不可透过的屏障，比如DNA和RNA的磷酸骨架，其也带负电荷。为了使核酸穿过细胞膜，研究人员开发了多种技术，大致分为三类：化学方法---利用载体分子包被核酸使其呈现中性电荷或正电荷。生物方法---利用基因工程细菌转染非细菌基因到细胞中。物理方法---在细胞膜表面产生一个瞬时的孔从而导入DNA。然而，没有一种方法适用于所有的细胞和实验，理想的方法应根据您的细胞类型和实验需要进行选择，理想的方法应具有高转染效率，低细胞毒性和对正常生理学的影响较小，并且易于使用和可重复性等特点。大部分细胞可以在无血清培养基中几个小时内保持健康。宁波细胞高效转染试剂

细胞转染实验简介：实验材料与器材：1、材料293T细胞、MyoD表达质粒和EGFP表达质粒、DMEM培养基、链霉素/青霉素(双抗)、FCS(小牛血清)、PBS(磷酸盐缓冲溶液)、胰酶/EDTA消化液、转染试剂(TransFast)2、器材20ul/200ul/1ml微量移液器和Tip头酒精灯、废液缸、血球计数板、涡旋振荡器、恒温水浴箱、台式离心机、35mm培养皿、转染管、15ml离心管、观察用倒置显微镜荧光显微镜和CCD。利用脂质体转染 法较重要的就是防止其毒性，因此脂质体与质粒的比例，细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要问题，通过实验摸索的合适转染条件对于效率的提高有巨大的作用。唐山正规细胞高效转染试剂服务电话使用基质珠做为固相支持可以使贴壁细胞悬浮生长。

细胞转染那些事儿：1.设置阴性和阳性对照：一般在转染后24-48h,靶基因即在细胞内表达。可依据不同的实验目的，24-48h后即可进行靶基因表达的检测等实验。2.转染后效率的检测方法：观察转染后细胞荧光情况；qPCR验证；WB检测敲减或过表达蛋白。3. 转染效率低，可采取以下两种方法：1 )复转染，即转染后12-24h再进行转染，前提是该细胞对脂质体的耐受性较好，转染后细胞死亡数较少。2 )通过药筛来杀死未转入成功的细胞，前提是该质粒带有物品抗性的基因。4. 电转时，不同的细胞需要的电压是不一样的，需要做预实验，摸索较佳条件。对于大多数细胞而言，较佳电压位于250-1250v/cm。电击后，应该将DNA和细胞混合液在室温下放置10min,使细胞恢复损伤。

如何高效率实现细胞转染：转化、转染、转导几个名词是从事生命科学研究的初学者经常碰到的，也是让人容易混淆的。他们之间有什么区别和联系呢：转化(transformation)指将质粒或其它外源DNA导入处于感受态的宿主细胞（原核生物），并使宿主细胞获得新的表型的过程。转导(transduction)由噬菌体或细胞细菌介导的遗传信息转移过程称转导或传染（Infection）。转染(transfection)是指真核细胞主动或者被动导入外源DNA片段而获得新表型的过程。对于真核生物，转染就是原核生物中转化的同义词。转染技术转染是将外源遗传物质导入真核细胞的过程，是细胞和分子生物学研究的重要工具。在现生命可续研究中，大部分的工作是利用基因功能研究来探索生命过程，如何将目的基因导入细胞内是科学实验过程中不可缺少的实验技术，而细胞转染是完成这一过程的必需步骤。细胞转染是完成这一过程的必需步骤。

细胞转染之PEI 转染法：1.细胞分盘：通过胰酶消化收集细胞，用适当的完全培养基以 1×105 至 4×105细胞/cm2 的密度平铺细胞于 35 mm 培养皿上（根据实验需要选择培养皿，使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的 70－90％）。将细胞置于含 5％CO2 的 37℃温箱中孵育 8-24 h，当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前 2 h 换液（用 1.5 ml 无血清培养基置换旧的培养基）。注：PEI转染法对细胞生长有克制作用，在换液前细胞几乎不生长，所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA 混合物以 35 mm 组织培养皿用 240 μl 反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入质粒 DNA（总量 1-3 μg 为佳），混匀后加入等体积 PEI工作液，充分混匀后室温静置 20-30 min ，较后将这 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中，轻轻摇动平皿混匀后置于含 5％ CO2的 37℃温箱孵育。蛋白表达和培养基的选择哺乳动物细胞系合成可溶的。芜湖细胞高效转染试剂厂家

瞬时表达分析检测未重组质粒DNA上基因的表达。宁波细胞高效转染试剂

细胞转染的原理、操作步骤以及小技巧：脂质体转染操作步骤：(1)细胞培养：取6cm细胞皿，向每孔中加入2mL含1~2×105个细胞培养液，37℃ CO2培养密度至40%~60%，密度过大，转染后不利筛选细胞。(2) 转染液制备：在EP管中制备以下两液(为转染每一个孔细胞所用的量)A液：用不含血清培养基稀释1ug 质粒DNA。B液：用不含血清培养基稀释2ul脂质体。分别将A液与B液轻弹混匀，静置5分钟。(3)吸取B液加入至A液中，轻弹混匀。室温中置10-15分钟。(4)转染准备：用1mL不含血清培养液漂洗两次，再加入4mL不含血清培养液。(5)转染：把A/B复合物缓缓加入培养液中，摇匀，37℃温箱置6~24小时，吸除无血清转染液，换入正常培养液继续培养。(6)瞬时转染后，可在48h-72h细胞长满之后，提取细胞蛋白或者RNA，验证敲减/过表达效率。宁波细胞高效转染试剂

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