细胞转染那些事儿:1. 选择传代次数较低并处于对数生长期的细胞进行转染。对大多数细胞而言,均需要在转染当天或前现在铺板,第二天上午进行转染,48h后收集细胞进行功能检测。对于原代细胞,可用促有丝分裂刺激物进行细胞活化。2.对于贴壁细胞,一般要求在转染前一日,用胰酶处理为单细胞悬液,重新接种于培养皿或瓶,较好在转染前4小时换一次新鲜培养液。3.支原体污染会严重降低细胞转染的效率,且支原体不会像细菌污染那么明显,因而转染前可用环丙沙星处理细胞以除去支原体。4.细胞转染时需要一定的细胞密度,以70-90%(贴壁细胞)或2×106-4×106细胞/ml(悬浮细胞)为宜。可以使用一些营养丰富的无血清培养基,或者在转染培养基中使用血清。广州正规细胞高效转染试剂
细胞转染常用步骤:1.转染试剂的准备①将400ul去核酸酶水加入管中,震荡10秒钟,溶解脂状物。②震荡后将试剂放在-20摄氏度保存,使用前还需震荡。2.选择合适的混合比例(1:1-1:2/脂质体体积:DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA,震荡后在加入合适体积的转染试剂,再次震荡。3.将混合液在室温放置10―15分钟。4.吸去培养板中的培养基,用PBS或者无血清培养基清洗一次。5.加入混合液,将细胞放回培养箱中培养一个小时。6.到时后,根据细胞种类决定是否移除混合液,之后加入完全培养基继续培养24-48小时。温州珠海细胞高效转染试剂在现生命可续研究中,大部分的工作是利用基因功能研究来探索生命过程。
转染的注意事项:培养基中的物品物品,比如青霉素和链霉素,是影响转染的培养基添加物。这些物品一般对于真核细胞无毒,但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性,使物品可以进入细胞。这降低了细胞的活性,导致转染效率低。所以,在转染培养基中不能使用物品,甚至在准备转染前进行细胞铺板时也要避免使用物品。这样,在转染前也不必润洗细胞。对于稳定转染,不要在选择性培养基中使用青霉素和链霉素,因为这些物品是GENETICIN选择性物品的竞争性克制剂。另外,为了保证无血清培养基中细胞的健康生长,使用比含血清培养基更少的物品量。 大多数已建立的细胞系都是非整倍体,原代培养包括了表达不同基因组合的细胞的混合物。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变,总染色体重组或基因调控变化等而演化,这会导致和转染相关的细胞行为的变化。如果随时间发现这种变化,融化一管新鲜的细胞可能会恢复原先的转染活性。比如,新鲜融化的NIH 3T3细胞比传代8次的细胞表现出更高的转染效率,融化细胞的进一步传代并没有降低转染效率。因此,如果观察到转染效率降低,可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。
细胞转染之PEI 转染法:1.细胞分盘:通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以 1×105 至 4×105细胞/cm2 的密度平铺细胞于 35 mm 培养皿上(根据实验需要选择培养皿,使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的 70-90%)。将细胞置于含 5%CO2 的 37℃温箱中孵育 8-24 h,当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前 2 h 换液(用 1.5 ml 无血清培养基置换旧的培养基)。注:PEI转染法对细胞生长有克制作用,在换液前细胞几乎不生长,所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA 混合物以 35 mm 组织培养皿用 240 μl 反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入质粒 DNA(总量 1-3 μg 为佳),混匀后加入等体积 PEI工作液,充分混匀后室温静置 20-30 min ,较后将这 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中,轻轻摇动平皿混匀后置于含 5% CO2的 37℃温箱孵育。其可降解性对体内应用也具有重要的意义。
细胞转染效率低下的几个大坑:1.试剂过期有时候转染效率低下,还要考虑会不会存在试剂过期的情况。毛博当年做转染整整半年,百思不得其解。较后发现,原来是Lipofectamine 2000过期了。换了之后,立马成功。根据我的经验,尽量使用开封半年内的,因为过了半年后,就算没有过失效期,但是细胞毒性较大增加,而转染效率却较大下降。千万不要为了省钱,影响实验进度哈。2.未加血清转染后未及时加入血清,会导致细胞大量死亡。一般要在转染后的4-6小时换液且换为有血清的培养基。根据毛博的经验,其实也可以在原来的无血清培养基里面滴加血清。这个时候,较好不要换液,不要打扰细胞,让它安安静静地休息。但是也不能过早加入血清。过早的话,会引起未转染的细胞疯狂生长。那么,什么是较佳时机呢?在20%的细胞变圆的时候,就是加血清的较佳时机。脂质体可以和带负电荷的核酸结合后重新形成复合物。珠海细胞高效转染试剂直销厂家
细胞中瞬时转染的外源基因表达时间有限,通常*持续几天。广州正规细胞高效转染试剂
细胞转染为什么不能加血清:传统的转染试剂一般会增加细胞的通透性,这样会把血清中的成分带入细胞,造成细胞毒性。阳离子脂质体,转染的过程是带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞。血清中含有大量的蛋白质,在转染过程中,带负电的蛋白质可能干扰阳离子脂质体对核酸的吸附,影响转染效率。同时,也会将血清中的蛋白带入细胞,引发细胞毒性,故不能有血清转染。这些转染试剂要求在转染前换无血清培养基,转染后 4-6h在更换成有血清培养基,这其实是为了减轻转染造成的细胞毒性和转染效率的降低。广州正规细胞高效转染试剂
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转染技术:国际上推出了一些阳离子聚合物基因转染技术,以其适用宿主范围广,操作简便,对细胞毒性小,转染效率高受到研究者们的青睐。其中树枝状聚合物(Dendrimers)和聚乙烯亚胺(Polyethylenimine,PEI)的转染性能较佳,但树枝状聚合物的结构不易于进一步改性,且其合成工艺复杂。聚乙烯亚胺是一种具有较高的阳离子电荷密度的有机大分子,每相隔二个碳个原子,即每“第三个原子都是质子化的氨基氮原子,使得聚合物网络在任何pH下都能充当有效的“质子海绵”(protonsponge)体。这种聚阳离子能将各种报告基因转入各种种属细胞,其效果好于脂质聚酰胺,经进一步的改性后,其转染性能好于树枝状聚...