在生物工艺流程中，需要使用核酸酶去除终产品中的核酸污染，而核酸酶作为外源成份，也需要在生产流程中去除。核酸酶去除工艺包括热灭活法、酶抑制剂、离子交换和亲合层析法等。慢病毒LV的pI在6.0-6.5左右，包装了完整基因组DNA后的AAV病毒颗粒PI大致为5.9，来自于S.marcescens的全能核酸酶pI 6.85左右，M-SAN HQ中盐核酸酶pI 8.7左右。因此，在同样的条件下，从LV/AAV溶液中去除M-SAN HQ中盐核酸酶比去除Benzonase全能核酸酶更容易、更彻底。ArcticZymes致力于提供高质量产品，中盐核酸酶具有好的批间一致性、稳定可靠的质量。天津上海倍笃生物中盐核酸酶
ArcticZymes厂家对盐活性核酸酶系列产品（Salt Active Nucleases，SANs）的生产及质控，在符合ISO13485:2016体系基础上，增加了cGMP质控标准，如microbes、endotoxin、蛋白酶等，符合USP-EP要求。厂家提供HQ级别和GMP级别的SAN HQ高盐核酸酶和M-SAN HQ中盐核酸酶，从成本角度分别满足临床前和早期临床阶段、商业化大规模生产阶段的需求；且GMP级SAN HQ高盐核酸酶已完成在FDA的药物主文件（Drug Master File, DMF）申报备案，助力加快药物申报流程。青海上海倍笃生物中盐核酸酶70950-150M-SAN HQ中盐核酸酶在生理盐条件下具有更高活性，降解HCD效率更高，便于HCD的去除。
在干细胞医治领域， 某些疾病靠单纯的细胞替代并不能取得满意效果。利用逆转录病毒和慢病毒将外源目的基因整合到干细胞基因组，对基因功能缺失的遗传病具有良好疗效，但也存在一定致瘤风险。相比之下，CRISPR/Cas9基因编辑技术能够精确实现基因敲入、敲除及碱基修复。因此， 采用CRISPR/Cas9基因编辑技术对干细胞进行基因改造，不仅能够增加干细胞医治的疾病范围，也能更大程度地保证疗效的安全性。目前，CRISPR/Cas9在干细胞医治领域发挥着重要作用，同时更多由CRISPR/Cas9编辑的干细胞药物正在开发中。
慢病毒大规模纯化的捕获步骤包括：膜过滤澄清，随后切向流过滤/超滤或者体积排阻色谱浓缩。此外，需用核酸酶（benzonase或M-SAN HQ中盐核酸酶）来去除细胞残留的、质粒来源的DNA污染。这两个步骤顺序可以调整，依据项目工艺而定。两种工艺路线各有优缺点：先用核酸酶消化的优点是可去除大的DNA片段，且后续步骤可以去除残留核酸酶；但所用的核酸酶的量也非常大。与此相反，将核酸酶步骤后置的优点是大幅降低核酸酶的量(成本降低)；但后面的步骤必须有将核酸酶去除的能力。此外，后期用核酸酶的缺点是核酸污染可能会结合慢病毒颗粒形成沉淀，进而导致慢病毒在纯化中流失，从而影响得率。染色质的双螺旋结构影响DNA的检测与酶切处理，而中盐核酸酶降解染色质效率更高。
除了获得载体的滴度及产量，生产慢病毒更关心的指标主要是各种污染物的去除。总DNA污染的去除百分比在99.1-99.84%，总蛋白污染物的去除百分比在99.85-99.9%。针对宿主细胞的DNA（HCD）及蛋白（HCP），有报道其去除百分比分别为99.8%和99.4%。因为不仅残存的DNA可能是个问题，而且DNA的大小以及由此引起的可能转移整个有功能的开放阅读框也是问题，因此监管机构对残存DNA污染的分子量上限的要求越来越高。例如，FDA的指南‘生产用于传染病适应症的病毒疫苗的细胞基质和其他生物材料的特性和鉴定’中说明，残留的细胞宿主的DNA片段不能超过一个功能基因的长度，估计在200bp左右。M-SAN HQ中盐核酸酶在细胞培养盐浓度下具有较高活性，缩短酶切时间、得到更短DNA片段；重庆M-SAN中盐核酸酶70950
中盐核酸酶的生产在符合ISO13485:2016体系基础上，增加了cGMP相应要求。天津上海倍笃生物中盐核酸酶
伦敦大学学院（UCL）的工艺开发团队，在细胞药物Car-T涉及的慢病毒（Lentivirus，LV）生产过程中，比较了Benzonase和M-SAN HQ中盐核酸酶在酶活、酶切时间、各阶段LV的稳定性等方面的表现，发现在生理盐条件下M-SAN HQ中盐核酸酶酶活更高、酶切时间更短，同时用纳米颗粒分析（NTA）技术确认M-SAN HQ组得到的LV病毒颗粒聚集更少、稳定性更高。他们会继续探究HCD是否影响LV的稳定性，及对LV侵染效率和生命周期是否有影响。通过更多研究，我们探究M-SAN HQ中盐核酸酶助力LV生产的关键机制。天津上海倍笃生物中盐核酸酶
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