对基因表达的影响：在微小RNA-1180转染对肾*细胞生长的影响的研究中，肾*细胞分为两组：dsControl组和miR-1180组。实时定量（qRT）-PCR检测p21mRNA的表达变化，结果显示转染miR-1180后，786-O和ACHN细胞中p21mRNA水平分别上调（P〈）和（P〈），p21蛋白表达趋势与qRT-PCR结果相符，CDK4、CDK6和CyclinD1蛋白的表达明显下调。同时，流式细胞术（FCM）检测细胞周期变化显示细胞周期被阻滞在G0/G1期，MTS结果显示细胞活力明显降低，集落形成实验显示细胞增殖能力降低。结论是miR-1180能******肾*细胞中p21蛋白的表达，并抑制肾*细胞786-O和ACHN的生长1。在微小RNA-330-5p过表达对宫颈*细胞C33A中肿瘤坏死因子受体相关因子4（TRAF4）基因表达的抑制作用和对C33A细胞增殖的影响的实验中，通过Lipofectamine2000转染试剂分别向宫颈*细胞系C33A瞬时转染miR-330-5p模拟物（设为实验组）或者转染miR-NC（设为对照组），结果显示与对照组相比，实验组C33A细胞中TRAF4mRNA下降（p＜），TRAF4蛋白下降（p＜）。集落形成实验显示，实验组C33A细胞的增殖能力明显下降（p＜）。结论是miR-330-5p可通过降低宫颈*细胞C33A中TRAF4的表达抑制宫颈*细胞C33A的增殖。 但似乎找到一种既能改善基因表达又不影响细胞、不对细胞造成损害的技术也至关重要。浙江转染试剂帮转染
调节免疫刺激特性鱼精蛋白稳定的RNA还可以调节免疫刺激特性。鱼精蛋白-RNA复合物可以刺激树突状细胞（DC），使其上调成熟标志物，并以剂量依赖的方式产生促炎性细胞因子1213。此外，两个DC亚群均以与IL-10有利的比率诱导T细胞增殖和IFNγ分泌1213。这表明鱼精蛋白-RNA复合物可用于离体刺激人mDC和pDC，用于免疫***环境1213。四、灵活的RNA递送系统平台鱼精蛋白作为RNA递送稳定剂，构建了一个灵活且多功能的平台。可以根据***目标进行调整，例如可以与靶向抗体融合实现精确递送，或者被消化成细胞穿透肽以提高转染效率，也可以与功能性聚合物非共价混合23。综上所述，鱼精蛋白作为RNA递送稳定剂，通过保护RNA免受降解、增强细胞穿透性、调节免疫刺激特性以及构建灵活的递送系统平台等多种机制，在RNA递送中发挥着重要作用。宁夏inhibtor转染试剂是由非离子核酸与阳离子脂质体（CLs）表面结合，形成多层脂质-核酸复合物而形成的。
在腺相关病毒载体（AAV）生产中的应用纳米凝胶由微流体产生，作为标准转染试剂如聚乙烯亚胺-MAX（PEI-MAX）的新型替代品，用于生产具有可比产量的AAV载体。在pDNA重量比为1:1:2和1:1:3（分别为pAAV顺式质粒、pDG9衣壳反式质粒和pHGTI辅助质粒）时形成纳米凝胶，在小规模下，载体产量与PEI-MAX相比没有***差异。氮/磷酸盐比为5和10的1:1:2重量比的纳米凝胶分别产生约8.8×10⁸vg/mL和约8.1×10⁸vg/mL的产量，而PEI-MAX约为1.1×10⁹vg/mL。在大规模生产中，优化的纳米凝胶以约7.4×10¹¹vg/mL的滴度产生AAV，与PEI-MAX的约1.2×10¹²vg/mL相比没有统计学差异，表明可以用易于实施的微流体技术以相对较低的成本实现与传统试剂相当的滴度10。
阳离子壳交联的类Knedel纳米粒子作为转染试剂结合机制：阳离子壳交联的类Knedel纳米颗粒（cSCKs）含有不同百分比伯胺和叔胺，通过与siRNA结合来发挥作用18。含100％伯胺的cSCK在HeLa细胞中的沉默效率比较高，能够抑制人血清中siRNA降解以及转染HeLa和小鼠巨噬细胞系。与融合的GALA肽复合可以增强iNOS在较低siRNA浓度下的siRNA沉默，这被证明可以增强摄取后的内体逃逸，进一步说明其结合机制可能涉及与siRNA的紧密结合以及促进细胞内转运。作用特点：cSCK-pa100在HeLa细胞、293T细胞和人支气管上皮（HEK）细胞中显示出比Lipofectamine2000更高的沉默效率，但在人支气管上皮（BEAS-2B）细胞和人乳腺上皮（MCF10a）细胞中可比。在小鼠巨噬细胞系中，cSCK-pa100表现出更大的iNOS沉默，并提供了更好的保护免于血清降解，证明了其作为siRNA转染剂的潜在用途。综上所述，不同类型的阳离子RNA转染试剂在结合RNA分子的机制上存在差异，主要涉及静电相互作用、纳米复合物形成以及与其他分子的协同作用等方面。这些差异导致了它们在转染效率、细胞毒性、对不同细胞类型的适用性等方面的不同特点。作为一般指导原则，建议使用早期传代的细胞以获得良好的转染效率，特别是涉及原代或干细胞的转染。
RNA转染试剂在不同细胞类型中的效果存在***差异。以下将详细阐述不同细胞类型对RNA转染试剂效果的具体影响。肾*细胞系786-O和ACHN：微小RNA-1180（miR-1180）转染对肾*细胞系786-O和ACHN生长有影响。实时定量（qRT）-PCR检测显示转染miR-1180后，786-O和ACHN细胞中p21mRNA水平分别上调。Westernblot检测表明p21蛋白表达趋势与qRT-PCR结果相符，同时细胞周期蛋白依赖性激酶（CDK）4、CDK6和CyclinD1蛋白的表达明显下调。流式细胞术（FCM）结果显示转染miR-1180后，位于G0/G1期的细胞比例明显增大，而位于S期和G2/M期的细胞比例明显下降，表明细胞周期被阻滞在G0/G1期。MTS结果显示转染miR-1180后，两种肾*细胞活力明显降低。集落形成实验显示miR-1180组的集落数数量明显较少，表明细胞增殖能力降低1。HeLa细胞：两种常见的RNA干扰（RNAi）转染试剂DharmaFECT1和INTERFERin，在使用非靶向siRNAs的模拟转染中，会引起HeLa细胞脂质组的改变。一些脂质对两种可能化学性质不同的转染试剂都有反应，而其他脂质种类只对其中一种试剂有反应。虽然这些脂质组改变的功能影响尚待研究，但实验表明在RNAi实验中使用适当的模拟转染对照非常重要，比较好辅以正交扰动。 在选择合适的小RNA分子进行转染相关功能分析之前，应先确定其实验需要。浙江转染试剂帮转染
影响物理转染或机械转染效率的因素在很大程度上取决于这些方法的基本原理。浙江转染试剂帮转染
在鲤上皮瘤细胞中的应用在鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究时，转染试剂和DNA的剂量以及取样时间缺乏统一的数据支持。选取两种常用转染试剂Lipofectamine®2000和FuGENE®HD进行多配组转染试验，在28℃，以35mm培养皿铺板，16μLLipofectamine®2000和4μgDNA在转染后48h达到比较高转染效率(±)%；12μLFuGENE®HD和4μgDNA在转染72h后转染效率达到(±)%。通过构建鲤高不饱和脂肪酸合成相关转录因子过氧化物酶体增殖物***受体蛋白α（PPARα）的EGFP标签载体进行验证，两种转染试剂分别获得了约4%和约8%的转染效率，并对下游脂肪酸去饱和酶2（fads2）基因的转录调控效应进行检测，结果为后续利用鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究提供了数据支持5。在巨噬细胞中的应用商业转染试剂Lipofectamine已***用于核酸的细胞质递送和与细胞内先天免疫传感器进行细胞源啮合，以触发I型干扰素（IFN）生产。然而，单独对IIFN响应的脂质切积胺的影响尚未详细研究。研究表明，Lipofectamine诱导在原始，I型IFN诱导依赖于干扰素调节因子（IRF）3和IRF7，并且部分需要达洛/白细胞介素-1受体-含有结构域的适配器诱导的干扰素-β。相比之下，转染试剂XFECT未***IIFN信令6。 浙江转染试剂帮转染
