网格蛋白介导的内吞途径呼吸道合胞病毒（RSV）是导致婴幼儿***的主要病毒病原体。研究表明，网格蛋白介导型内吞途径是目前研究得较为透彻且经典的病毒入胞途径。其中网格蛋白在此途径中的地位很重要。通过针对网格蛋白重链的小干扰RNA（siRNA）抑制网格蛋白的表达，可以有效的抑制RSV***Hela细胞。这提示网格蛋白介导的内吞途径在病毒感染细胞过程中发挥重要作用，同时也暗示了在某些情况下，RNA转染试剂可能利用这一途径进入细胞21。二、小窝蛋白介导的内吞途径在研究非病毒载体用于小干扰RNA（siRNA）递送时发现，将用组氨酸和半胱氨酸修饰的HIV-1Tat肽（mTat）与聚乙烯亚胺（PEI）结合，并与阳离子两亲脂质基试剂INTERFERin（INT）组合成的杂合载体（mTat/PEI/INT）能高效递送siRNA。研究表明，FilipinIII和β-环糊精（小窝蛋白介导的内吞作用抑制剂）能***抑制mTat/PEI/INT/siRNA转染，而氯丙嗪（网格蛋白介导的内吞作用抑制剂）则不能抑制mTat/PEI/INT/siRNA转染。此外，mTat/PEI/INT在4°C时的转染效率明显低于37°C。这些结果表明，mTat/PEI/INT作为一种潜在的有吸引力的非病毒载体用于siRNA递送，其转染过程可能是通过小窝蛋白介导且依赖温度的内吞途径实现的。作为一般指导原则，建议使用早期传代的细胞以获得良好的转染效率，特别是涉及原代或干细胞的转染。辽宁DNA转染试剂
在鲤上皮瘤细胞中的应用在鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究时，转染试剂和DNA的剂量以及取样时间缺乏统一的数据支持。选取两种常用转染试剂Lipofectamine®2000和FuGENE®HD进行多配组转染试验，在28℃，以35mm培养皿铺板，16μLLipofectamine®2000和4μgDNA在转染后48h达到比较高转染效率(±)%；12μLFuGENE®HD和4μgDNA在转染72h后转染效率达到(±)%。通过构建鲤高不饱和脂肪酸合成相关转录因子过氧化物酶体增殖物***受体蛋白α（PPARα）的EGFP标签载体进行验证，两种转染试剂分别获得了约4%和约8%的转染效率，并对下游脂肪酸去饱和酶2（fads2）基因的转录调控效应进行检测，结果为后续利用鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究提供了数据支持5。在巨噬细胞中的应用商业转染试剂Lipofectamine已***用于核酸的细胞质递送和与细胞内先天免疫传感器进行细胞源啮合，以触发I型干扰素（IFN）生产。然而，单独对IIFN响应的脂质切积胺的影响尚未详细研究。研究表明，Lipofectamine诱导在原始，I型IFN诱导依赖于干扰素调节因子（IRF）3和IRF7，并且部分需要达洛/白细胞介素-1受体-含有结构域的适配器诱导的干扰素-β。相比之下，转染试剂XFECT未***IIFN信令6。 辽宁DNA转染试剂超声辅助转染涉及在宿主细胞膜上制造微小的孔，以促进核酸(包括DNA和RNA)的传递。
RNA电穿孔高效转染原代淋巴细胞：使用体外转录的mRNA通过电穿孔可以实现高基因转染效率和低转染相关毒性。例如，在用GFP或mCD62L转染的受激原代人和鼠T淋巴细胞中观察到90％以上的转基因表达和80％以上的活细胞。GFPRNA对未刺激的人PBMC或鼠脾细胞进行电穿孔，分别产生95％和56％的GFP⁺细胞。此外，基因表达迅速且持久，对经过RNA电穿孔的T淋巴细胞未观察到不良影响7。五、优化共转染方法整合共转染和平行共转染：研究不同的共转染和连续转染方法，特别是体外转录信使RNA（IVTmRNA）。对于在纳米载体形成之前预混合的IVTmRNAs（整合共转染）和同时用单独形成的纳米载体转染细胞（平行共转染），分析决定共转染效率的定量参数。同时递送siRNA和mRNA也表明整合方法的比较高共转染效率，但由于两个**运营实体的峰值输出在动力学上不同，连续交付的效率比较高。
对细胞周期的影响：在微小RNA-1180转染肾*细胞的实验中，FCM结果显示，转染miR-1180后，位于G0/G1期的细胞比例明显增大，而位于S期和G2/M期的细胞比例明显下降，表明细胞周期被阻滞在G0/G1期1。对转染效率的影响：在脂质体介导RNA干扰质粒转染鸡成骨细胞条件的优化实验中，对转染前细胞融合度、质粒质量与脂质体体积比及转染时间进行优化，在荧光倒置显微镜下观察并计算转染效率。结果表明，在转染前细胞融合达到90％以上，质粒DNA与脂质体比例为1:2.5时转染效率比较高，并且在转染后48h转染效果比较好3。在筛选更优的脂质体转染试剂的实验中，分别用RNAiMax及MessageMax将modGFP转染入MEF细胞，流式分析发现MessageMax的转染效率为（83.33%±3.23%），略高于RNAiMax的（78.77%±6.12%），两者没有统计学差异，但是流式分析和荧光显微镜观察均表明MessageMax转染后1周内的蛋白翻译表达效率更高，是更高效的modRNA转染试剂8。
RNA 转染试剂的效果受到多种因素的影响，包括细胞类型、转染试剂种类、转染条件等。在实际应用中，需要根据具体的实验需求选择合适的转染试剂和优化转染条件，以提高转染效率并减少对细胞的毒性作用。 在转染实验中使用对照对于确定所使用的转染试剂和核酸的效果和效率至关重要。
考虑细胞毒性低细胞毒性的转染试剂对于保持细胞的活性和正常生理功能至关重要。评估细胞活力：可以通过检测细胞的存活率、增殖能力等指标来评估转染试剂的细胞毒性。在研究不同转染试剂对C2C12细胞的转染效率时，通过优化DNA:转染剂比例和细胞密度，使所有试剂在达到较高转染效率的同时，对细胞生长和活力的影响有限6。在比较不同转染试剂递送siRNA的摄取、敲低效率和毒性情况的研究中，新开发的CALNPRNAi转染试剂转染效率***高于传统转染试剂，同时毒性比较低7。选择温和的试剂：一些转染试剂可能对细胞的毒性较小，例如基于脂质的转染试剂通常比基于病毒的转染试剂更温和。在颅内递送合成mRNA的研究中，使用常用的转染试剂将合成mRNA递送至小鼠大脑，结果表明该模型中合成mRNA可以成功递送至大脑，且没有可测量的毒性8。其结构的一个共同特征是分子中存在许多带正电的基团，这些基团被质子化成带正电的聚合物。湖南转染试剂动物实验
利用外泌体途径的一种潜在方法是将脂质体核酸重新包装到外泌体中。辽宁DNA转染试剂
考虑实验目的和应用场景不同的实验目的和应用场景可能需要不同类型的转染试剂。***应用：如果转染试剂用于基因***或药物研发等应用，那么需要选择具有良好生物相容性和安全性的试剂。在安全有效的递送mRNA使用改性PEI基脂质聚合物的研究中，探索了All-Fect和Leu-FectC作为新型转染试剂，这些试剂具有优异的生物相容性、高效的递送能力和强大的溶酶体逃逸能力，可直接增加mRNA稳定性并促进高效基因翻译，适用于基因***等应用4。基础研究：对于基础研究实验，可能更注重转染效率和实验的可重复性。在不同转染方式用于modRNA转染人脂肪干细胞的初步研究中，比较了不同转染方式的转染效率和蛋白表达情况，以及在体内促进血管再生的效果，为基础研究提供了参考10。综上所述，选择**适合的RNA转染试剂需要综合考虑转染效率、细胞毒性、RNA需求、血清兼容性、多因子转染能力以及实验目的和应用场景等多个因素。在选择转染试剂时，可以参考已有的研究文献，进行预实验以评估不同试剂的性能，并根据实验需求和条件选择**合适的转染试剂。辽宁DNA转染试剂
