WISTAR大鼠主要用途：多用于肿块瘤体、免疫、药理、内分泌。简介：1907年由美国维斯塔尔(Wistar)研究所育成，现己遍及世界各国的实验室。我国从日本及前苏联引进，是引进较早、使用较广阔、数量较多的大鼠品系之一。特点：远交系大鼠，头部较宽、耳朵较长、尾的长度小于身长。性周期稳定，繁殖力强，产仔多，平均每胎产仔在10只左右，生长发育快。10周龄时雄鼠体重可达280～300g，雌鼠达170-260g。性情温顺。对传染病的抵抗力较强。自发性肿块瘤体发生率低。目前各地饲养的Wistar大鼠的遗传状况差异较大。常州卡文斯实验鼠品系涵盖C57BL/6、BALB/c等常用科研品种。A53T小鼠技术推广
品系编号:C000124品系描述:GK大鼠新生期血糖水平正常，成年期发展为显性糖尿病，表现为轻度空腹超出血糖标准、明显的餐后超出血糖标准、高胰岛素血症、胰岛素抵抗、葡萄糖刺激的胰岛素分泌受损，不伴酮症。雄性和雌性发病率相同，但雌性血糖浓度稍低于雄性。雄性大约在14-16周龄时出现I型糖尿病，即出现了血糖升高、心率降低、心肌萎缩等症状,与人类I型糖尿病心脏病进展极为相似，并有明显的心肌肥大、间质纤维增生和持续的心肌细胞凋亡应用领域:GK大鼠是非胰岛素依赖型(NIDDM)、非肥胖自发性、I型糖尿病动物模型NOD-Scid小鼠数量卡文斯实验鼠在行为学实验中表现稳定，数据可靠。
腹腔注射腹腔注射虽然简单，也有翻车的危险。一针下去，扎到内脏，呜呼哀哉。先将小鼠腹腔注射操作要点总结如下：抓鼠后选择低尾高位的位置；选择下腹部腹中线进针；小于60度进针有落空感；回抽未见血后推针，旋转半圈拔针。腹腔注射适合刺激性小的水溶性药物的用药，利用腹腔膜及大小网膜血管丰富，吸收面积大等特点，使药物快速入血。注意事项：1、腹腔注射只宜用等渗药液（如5％葡萄糖液、0.9％生理盐水）适当配无刺激性的药物（如肌苷、维生素B1、维生素C），而且注射量不宜太大，注射药液温度应与体温相近。2、注射时，小鼠头部要呈低位，使内脏向胸部侧偏移，针头不宜过长，以防止刺伤肠道、膀胱或其它内脏身体部位。3、进针时不要犹豫，切勿为避免刺伤身体部位，针头刚插入皮肤就向上挑起，此时针头极有可能还没刺破腹腔壁，只是将液体注射在腹部皮下。
卡文斯有专业的小鼠代理繁育团队，丰富的项目经验拥有10年以上SPF级动物饲养与管理经验，为国内外闻名院校、医院等提供服务，客户遍布全国各地区专业的技术团队，保障动物质量专业的项目管理体系，实时跟进小鼠繁育进程，定期项目数据反馈业务优势：严格的饲养条件温度20-26°C相对湿度40-70%噪音≤60dB氨浓度<14ppm换气频率>15次/小时昼夜明暗交替12h/12h严格的饲养管理要求饮用水高压灭菌后的酸化水的酸化水，PH值在、垫料及饮水的更换频率至少每周一次，所有的脏笼具，水瓶浸泡井通过高压水枪清洗后，均经高压灭菌后方可进入屏障设施，其他不能进行高压灭菌的物品则通过严格的消毒流程进入。动物的日常检查生长情况的日常观察及异常情况反馈多面的质量监测检测内容检测手段检测周期小鼠（哨兵鼠）病原委外/自检每季度1次/每月1次小鼠饲料无菌检测委外/自检每批次小鼠饮水无菌检测委外/自检每季度1次/每月1次小鼠垫料无菌检测委外/自检每季度1次/每月1次消毒效果验证。常州卡文斯实验鼠的基因编辑模型高效，助力生命科学领域突破性研究。
实验鼠会不会咬人？咬了之后会不会得病？内心慌张惊恐怎么办？一般在受到惊吓的情况下小鼠才会咬人。其中黑色小鼠比白色小鼠更加“凶残”一些。但是，只要你克服了心理恐惧，再加上正确的手法，小鼠轻轻松松get到手。就算小鼠咬到你了，请不要担心，因为它们的居住环境比人类还要干净。通常科研工作者会将实验鼠饲养在专门的动物房中，会有专职人员“伺候”它们的吃喝拉撒。对于更娇贵的免疫缺陷的小鼠来说，它们会依据免疫系统的缺陷程度住在不同SPF(Specific-pathogen-free无特定病原体)级的实验室中，除了不能到处跑，较终要献身科研外，简直生活得不要太幸福，连科研人员见它们一面，都要穿上层层的防护服，通过一道道除菌装置。被咬到之后，千万不要慌张，因为你除了疼和血液流出之外，不会受到其他损失。如果实在控制不住自己的惊恐情绪，也请千万不要把小鼠扔出去！因为它们的天性是贴着角落跑，如果你把它们扔出去，几乎没有再把它们抓回来的可能性了。从某种意义上说，有着这样一种逻辑关系：扔出去的小鼠=抓不住=样品丢失=实验失败=半年白做=毕业更加遥远=头秃+抑郁=危害身心健康！常州卡文斯实验鼠适用于药物安全性评价和毒理学研究。乳腺肿瘤小鼠数量
常州卡文斯实验鼠在心血管疾病研究领域具有优异建模能力。A53T小鼠技术推广
小鼠的抓取固定1.小鼠的抓取（1）右手提起小鼠尾巴，将其放在鼠笼盖或其他粗糙表面上（2）小鼠向前挣扎爬行时，再用左手拇指和食指抓住鼠耳和颈部皮肤抓取固定时需注意:过分用力,会使动物窒息或颈椎脱臼;用力过小,动物头部能反转来咬伤实验者的手。因此实验者必须反复练习,熟练掌握。2.小鼠的固定（1）徒手固定用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。固定板固定鼠麻醉后置小鼠固定板上，取仰卧位，用胶布缠粘四肢，再用针透过胶布扎在板上，从而将小鼠固定在小鼠固定板上。（3）固定架固定让小鼠直接钻入固定架里,封好固定架的封口,露出尾巴。此装置特别适用于小鼠尾静脉注射等。A53T小鼠技术推广
