非人灵长类动物是神经科学研究的重要动物模型，超高场磁共振脑成像技术在非人灵长类动物研究中具有重要作用。非人灵长类动物超高场磁共振脑成像技术进展：徐斌、高阳、王菁综述了非人灵长类动物超高场磁共振脑成像应用、面临的技术挑战以及当前的技术解决方案等3。磁共振脑成像技术是目前**主要的非侵入式大脑神经信号探测手段，非人灵长类动物磁共振脑成像研究对于深入理解磁共振脑成像生理机制、研发定量生理探测技术、神经科学基础研究、心理学以及临床病理机制研究等都具有重要作用。但非人灵长类动物磁共振脑成像面临着缺少适配商用系统、需要更高成像分辨率以及对多样化动物实验需求兼容性等技术挑战。超高场磁共振具有高信噪比、高脑血氧水平依赖信号检测灵敏度和亚毫米级高分辨率成像能力等优势，有潜力应用于非人灵长类动物超高分辨率脑成像研究。纳米颗粒，由于其在DNA转运到细胞中的保护能力，在不久的将来可以用作转基因的非病毒载体。辽宁天津转染试剂
对细胞周期的影响：在微小RNA-1180转染肾*细胞的实验中，FCM结果显示，转染miR-1180后，位于G0/G1期的细胞比例明显增大，而位于S期和G2/M期的细胞比例明显下降，表明细胞周期被阻滞在G0/G1期1。对转染效率的影响：在脂质体介导RNA干扰质粒转染鸡成骨细胞条件的优化实验中，对转染前细胞融合度、质粒质量与脂质体体积比及转染时间进行优化，在荧光倒置显微镜下观察并计算转染效率。结果表明，在转染前细胞融合达到90％以上，质粒DNA与脂质体比例为1:2.5时转染效率比较高，并且在转染后48h转染效果比较好3。在筛选更优的脂质体转染试剂的实验中，分别用RNAiMax及MessageMax将modGFP转染入MEF细胞，流式分析发现MessageMax的转染效率为（83.33%±3.23%），略高于RNAiMax的（78.77%±6.12%），两者没有统计学差异，但是流式分析和荧光显微镜观察均表明MessageMax转染后1周内的蛋白翻译表达效率更高，是更高效的modRNA转染试剂8。
RNA 转染试剂的效果受到多种因素的影响，包括细胞类型、转染试剂种类、转染条件等。在实际应用中，需要根据具体的实验需求选择合适的转染试剂和优化转染条件，以提高转染效率并减少对细胞的毒性作用。 广东肝脏转染试剂选择合适的转染试剂可能取决于几个因素，包括转染核酸的类型和转染的复杂性(单转染或共转染)。
在鲤上皮瘤细胞中的应用在鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究时，转染试剂和DNA的剂量以及取样时间缺乏统一的数据支持。选取两种常用转染试剂Lipofectamine®2000和FuGENE®HD进行多配组转染试验，在28℃，以35mm培养皿铺板，16μLLipofectamine®2000和4μgDNA在转染后48h达到比较高转染效率(±)%；12μLFuGENE®HD和4μgDNA在转染72h后转染效率达到(±)%。通过构建鲤高不饱和脂肪酸合成相关转录因子过氧化物酶体增殖物***受体蛋白α（PPARα）的EGFP标签载体进行验证，两种转染试剂分别获得了约4%和约8%的转染效率，并对下游脂肪酸去饱和酶2（fads2）基因的转录调控效应进行检测，结果为后续利用鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究提供了数据支持5。在巨噬细胞中的应用商业转染试剂Lipofectamine已***用于核酸的细胞质递送和与细胞内先天免疫传感器进行细胞源啮合，以触发I型干扰素（IFN）生产。然而，单独对IIFN响应的脂质切积胺的影响尚未详细研究。研究表明，Lipofectamine诱导在原始，I型IFN诱导依赖于干扰素调节因子（IRF）3和IRF7，并且部分需要达洛/白细胞介素-1受体-含有结构域的适配器诱导的干扰素-β。相比之下，转染试剂XFECT未***IIFN信令6。
诱导交替剪接和恢复功能蛋白：某些转染试剂在将RNA导入细胞后，可诱导特定的生物学效应。例如，2'-OMeUtaPS介导的转染，在HeLapLuc705细胞中，转染的反义PMO序列诱导了编码萤光素酶的前mRNA的外显子23的交替剪接，恢复功能性萤光素酶的生产，而不会损害细胞毒性5。在肌营养不良症mdx小鼠模型的肌管肌肉细胞中，靶向聚A尾PMO序列针对编码肌营养不良蛋白的前mRNA的剪接位点，触发交替剪接事件，导致突变外显子（外显子23）从pre-mRNA中切除并产生功能性肌营养不良蛋白2。提高转染效率和减少细胞死亡：为了优化并促进将病毒RNA导入哺乳动物细胞，研究人员比较了不同的市售RNA转染试剂将黄热病病毒（YFV）和丙型肝炎病毒（HCV）RNA复制子递送至Huh7细胞的能力，并与电穿孔进行比较。结果发现，如果适当优化，某些试剂将优于电穿孔，细胞死亡少得多，RNA需求少，转染效率提高3。常用的物理/机械转染方法包括电穿孔、声孔、基因显微注射和激光照射。
考虑细胞毒性低细胞毒性的转染试剂对于保持细胞的活性和正常生理功能至关重要。评估细胞活力：可以通过检测细胞的存活率、增殖能力等指标来评估转染试剂的细胞毒性。在研究不同转染试剂对C2C12细胞的转染效率时，通过优化DNA:转染剂比例和细胞密度，使所有试剂在达到较高转染效率的同时，对细胞生长和活力的影响有限6。在比较不同转染试剂递送siRNA的摄取、敲低效率和毒性情况的研究中，新开发的CALNPRNAi转染试剂转染效率***高于传统转染试剂，同时毒性比较低7。选择温和的试剂：一些转染试剂可能对细胞的毒性较小，例如基于脂质的转染试剂通常比基于病毒的转染试剂更温和。在颅内递送合成mRNA的研究中，使用常用的转染试剂将合成mRNA递送至小鼠大脑，结果表明该模型中合成mRNA可以成功递送至大脑，且没有可测量的毒性8。阳离子脂质体合成中常用的分子是中性脂质二油基磷脂酰乙醇胺(DOPE)。辽宁天津转染试剂
脂质颗粒的加入导致内体DNA释放增加。辽宁天津转染试剂
在人类多能干细胞衍生的心肌细胞（HPSC-CMs）中的应用低转染效率是实现HPSC-CMs在疾病建模和心脏修复研究中广泛应用的障碍。通过优化四个基本参数，即血清补充剂、复制和转染之间的时间、试剂与DNA比以及细胞密度，使用Promega的Viafect™转染试剂能够将HPSC-CMs转染至约95%的效率28。尽管活力有所降低，但转染后的HPSC-CMs仍保持了高纯度和结构完整性，确保了至少14天的转染基因持续表达，为心脏相关疾病的研究开辟了新机遇。在C2C12细胞中的应用C2C12细胞在肌肉领域***使用，但它们和原代成肌细胞一样难以转染，影响了下游实验。虽然自2015年以来超过95%的使用C2C12细胞的报告使用了一种金标准转染剂（如Lipofectamine®），但有研究表明其效率低于30%。通过比较五种商业试剂（Lipofectamine®3000、Viafect™、Fugene®HD、C2C12CellAvalanche®和JetOPTIMUS®）在C2C12细胞中的转染效率，发现通过优化DNA:转染剂比例和细胞密度，所有试剂都能达到超过60%的转染效率，且对细胞生长和活力影响有限。这些试剂还能在C2C12细胞中转染后高效生成GFP阳性的肌管，但在转染siRNA和对原代肌肉细胞的转染中表现出较低效率和较高毒性3。辽宁天津转染试剂
