南京转染试剂难转染

脂质体转染是一种常用的将外源基因导入细胞的方法，脂质体大小：脂质体的大小也可能影响转染效率。较小的脂质体可能更容易进入细胞，但可能携带的 DNA 量较少。较大的脂质体可能携带更多的 DNA，但可能更难进入细胞。研究发现，阳离子脂质体的大小与转染效率之间存在一定的关系。随着脂质体尺寸的增加，转染的主要途径可能从网格蛋白介导的内吞作用转变为脂筏介导的内吞作用，同时也可能观察到巨胞饮作用。这种变化可能会影响脂质体在细胞内的运输和释放，从而影响转染效率。提高 RNA 转染效率的策略。南京转染试剂难转染

    在鲤上皮瘤细胞中的应用在鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究时，转染试剂和DNA的剂量以及取样时间缺乏统一的数据支持。选取两种常用转染试剂Lipofectamine®2000和FuGENE®HD进行多配组转染试验，在28℃，以35mm培养皿铺板，16μLLipofectamine®2000和4μgDNA在转染后48h达到比较高转染效率(±)%；12μLFuGENE®HD和4μgDNA在转染72h后转染效率达到(±)%。通过构建鲤高不饱和脂肪酸合成相关转录因子过氧化物酶体增殖物***受体蛋白α（PPARα）的EGFP标签载体进行验证，两种转染试剂分别获得了约4%和约8%的转染效率，并对下游脂肪酸去饱和酶2（fads2）基因的转录调控效应进行检测，结果为后续利用鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究提供了数据支持5。在巨噬细胞中的应用商业转染试剂Lipofectamine已***用于核酸的细胞质递送和与细胞内先天免疫传感器进行细胞源啮合，以触发I型干扰素（IFN）生产。然而，单独对IIFN响应的脂质切积胺的影响尚未详细研究。研究表明，Lipofectamine诱导在原始，I型IFN诱导依赖于干扰素调节因子（IRF）3和IRF7，并且部分需要达洛/白细胞介素-1受体-含有结构域的适配器诱导的干扰素-β。相比之下，转染试剂XFECT未***IIFN信令6。 肝脏转染试剂检测超声辅助转染涉及在宿主细胞膜上制造微小的孔，以促进核酸(包括DNA和RNA)的传递。

    RNA转染试剂在不同细胞类型中的效果存在***差异。以下将详细阐述不同细胞类型对RNA转染试剂效果的具体影响。肾*细胞系786-O和ACHN：微小RNA-1180（miR-1180）转染对肾*细胞系786-O和ACHN生长有影响。实时定量（qRT）-PCR检测显示转染miR-1180后，786-O和ACHN细胞中p21mRNA水平分别上调。Westernblot检测表明p21蛋白表达趋势与qRT-PCR结果相符，同时细胞周期蛋白依赖性激酶（CDK）4、CDK6和CyclinD1蛋白的表达明显下调。流式细胞术（FCM）结果显示转染miR-1180后，位于G0/G1期的细胞比例明显增大，而位于S期和G2/M期的细胞比例明显下降，表明细胞周期被阻滞在G0/G1期。MTS结果显示转染miR-1180后，两种肾*细胞活力明显降低。集落形成实验显示miR-1180组的集落数数量明显较少，表明细胞增殖能力降低1。HeLa细胞：两种常见的RNA干扰（RNAi）转染试剂DharmaFECT1和INTERFERin，在使用非靶向siRNAs的模拟转染中，会引起HeLa细胞脂质组的改变。一些脂质对两种可能化学性质不同的转染试剂都有反应，而其他脂质种类只对其中一种试剂有反应。虽然这些脂质组改变的功能影响尚待研究，但实验表明在RNAi实验中使用适当的模拟转染对照非常重要，比较好辅以正交扰动。

纳米颗粒递送药物并发挥功能的能力在很大程度上取决于它们被细胞摄取的机制。以蒲公英汤剂体为例，研究发现亲溶酶体物质能***抑制蒲公英汤剂体进入细胞；巨胞饮抑制剂细胞松弛素D和阿米洛利能***降低蒲公英汤剂体的胞内摄入，且呈现剂量依赖性，敲减Rac1和PAK1也有效地抑制其进入细胞。这些结果提示蒲公英汤剂体通过内吞进入A549细胞且主要由巨胞饮介导26。同理，RNA转染试剂在某些情况下也可能利用巨胞饮途径进入细胞。电穿孔转染中的内吞途径电穿孔转染是一种用于基因递送的技术，在研究其机制时发现，用冰冷介质处理或在电穿孔转染前使用内吞抑制剂处理三种不同的人类细胞系（HEK293、HCT116和HT29）。结果表明，用冰冷介质、氯丙嗪或染料木黄酮处理会***降低所有三种细胞系的电穿孔转染效率，但阿米洛利处理对电穿孔转染效率影响不***。对于用小干扰RNA（siRNA）处理的细胞，只有敲低网格蛋白重链（CLTC）会导致所有三种细胞系的电穿孔转染效率降低。这些数据表明，网格蛋白介导的内吞作用在电穿孔转染中起着重要作用27。研究人员集中研究了将合成t细胞免疫原作为DNA疫苗使用的方法。

转染时间：转染时间的长短也会影响转染效率。过长或过短的转染时间都可能导致转染效率降低。在阳离子脂质体Lipofectamine2000对PC12细胞的转染实验中，转染时间为6h时转染效率较高3。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，Hela细胞系和Siha细胞系的比较好转染时间为24小时1。细胞接种密度：细胞接种密度也会影响转染效率。过高或过低的细胞接种密度都可能导致转染效率降低。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，2×105接种密度时转染效率比较高9。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，Hela细胞系和Siha细胞系的比较好接种密度分别为1.5×104（每孔24孔板）1。血清的有无：血清的存在可能会影响脂质体转染效率。一些实验表明，血清可能会降低转染效率，而另一些实验则表明血清对转染效率没有影响。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，与含血清培养基相比，只有Siha细胞在无血清培养基中培养时在转染前获得了更高的转染效率（P＜0.01）1。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，血清在本实验室条件下并不影响转染效率。RNA 转染试剂在不同细胞类型中的效果存在明显差异。天津转染试剂教做

阳离子 RNA 转染试剂在结合 RNA 分子机制上存在多种差异。南京转染试剂难转染

阳离子壳交联的类Knedel纳米粒子作为转染试剂结合机制：阳离子壳交联的类Knedel纳米颗粒（cSCKs）含有不同百分比伯胺和叔胺，通过与siRNA结合来发挥作用18。含100％伯胺的cSCK在HeLa细胞中的沉默效率比较高，能够抑制人血清中siRNA降解以及转染HeLa和小鼠巨噬细胞系。与融合的GALA肽复合可以增强iNOS在较低siRNA浓度下的siRNA沉默，这被证明可以增强摄取后的内体逃逸，进一步说明其结合机制可能涉及与siRNA的紧密结合以及促进细胞内转运。作用特点：cSCK-pa100在HeLa细胞、293T细胞和人支气管上皮（HEK）细胞中显示出比Lipofectamine2000更高的沉默效率，但在人支气管上皮（BEAS-2B）细胞和人乳腺上皮（MCF10a）细胞中可比。在小鼠巨噬细胞系中，cSCK-pa100表现出更大的iNOS沉默，并提供了更好的保护免于血清降解，证明了其作为siRNA转染剂的潜在用途。综上所述，不同类型的阳离子RNA转染试剂在结合RNA分子的机制上存在差异，主要涉及静电相互作用、纳米复合物形成以及与其他分子的协同作用等方面。这些差异导致了它们在转染效率、细胞毒性、对不同细胞类型的适用性等方面的不同特点。南京转染试剂难转染